基于hepG2细胞模型的丙烯酰胺危害性风险评估
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一部分：文献综述 | 第9-27页 |
| 1. 引言 | 第9-10页 |
| 2. 丙烯酰胺的形成机制 | 第10-12页 |
| ·丙烯酰胺形成主要途径 | 第10-11页 |
| ·丙烯酰胺形成次要途径 | 第11-12页 |
| ·丙烯酰胺形成的主要影响因素 | 第12页 |
| 3. 丙烯酰胺风险评估 | 第12-20页 |
| ·危害识别 | 第13-16页 |
| ·致癌性 | 第13-14页 |
| ·基因毒性 | 第14-15页 |
| ·神经毒性 | 第15页 |
| ·生殖和发育毒性 | 第15-16页 |
| ·危害描述 | 第16页 |
| ·暴露评估 | 第16-18页 |
| ·环境中的丙烯酰胺暴露 | 第17页 |
| ·食品中的丙烯酰胺暴露 | 第17-18页 |
| ·风险描述 | 第18-19页 |
| ·风险管理 | 第19-20页 |
| 4. 丙烯酰胺缓解策略 | 第20-23页 |
| ·生物学方法 | 第20-21页 |
| ·物理学方法 | 第21-22页 |
| ·化学方法 | 第22-23页 |
| 5. 组学和丙烯酰胺风险评估 | 第23-26页 |
| ·生物标志物和丙烯酰胺风险评估 | 第23-24页 |
| ·食物频率问卷（FFQ）和丙烯酰胺风险评估 | 第24-25页 |
| ·丙烯酰胺风险评估现有的问题 | 第25-26页 |
| ·组学与丙烯酰胺风险评估 | 第26页 |
| 6. 总结与展望 | 第26-27页 |
| 第二部分：论文研究 | 第27-58页 |
| 材料与方法 | 第27-33页 |
| 1. 实验材料 | 第27-28页 |
| ·实验原材料 | 第27-28页 |
| ·主要药品/试剂与工具 | 第28页 |
| ·主要仪器及生产商 | 第28页 |
| 2. 实验方法 | 第28-33页 |
| ·细胞培养及细胞样品制备 | 第28-29页 |
| ·细胞培养方法 | 第28-29页 |
| ·转录组学细胞样品制备 | 第29页 |
| ·UPLC-MS 检测细胞处理 | 第29页 |
| ·药物处理与细胞形态学分析 | 第29-30页 |
| ·药物处理 | 第29页 |
| ·细胞形态学分析 | 第29-30页 |
| ·转录组处理及数据分析 | 第30-31页 |
| ·RNA-seq 处理 | 第30-31页 |
| ·转录组数据分析 | 第31页 |
| ·UPLC-MS 检测方法 | 第31-33页 |
| 3. 实验设计流程图 | 第33页 |
| 结果及分析 | 第33-52页 |
| 1. 药物浓度与处理时间的确立 | 第33-35页 |
| 2. 细胞生物学分析 | 第35-40页 |
| ·形态学分析 | 第35-36页 |
| ·细胞存活率分析 | 第36-38页 |
| ·细胞死亡率分析 | 第38-40页 |
| 3. 转录组学分析 | 第40-46页 |
| ·基因分析与筛选 | 第41-42页 |
| ·GO 分析 | 第42-44页 |
| ·pathway 分析 | 第44-46页 |
| 4．丙烯酰胺 lcms 方法的建立 | 第46-52页 |
| ·实验参数的确定 | 第47-49页 |
| ·样品萃取方法的确定 | 第47-48页 |
| ·实验参数的优化 | 第48-49页 |
| ·样品萃取处理 | 第49-50页 |
| ·回收率的测定 | 第50-51页 |
| ·稳定性与精密度检测 | 第51-52页 |
| 讨论 | 第52-56页 |
| 总结与展望 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-74页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第74页 |
