| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-15页 |
| 1.1 樟芝简介 | 第8页 |
| 1.2 樟芝的生理活性产物 | 第8-9页 |
| 1.3 樟芝人工培养方式的研究进展 | 第9页 |
| 1.3.1 段木栽培法 | 第9页 |
| 1.3.2 固态发酵法 | 第9页 |
| 1.3.3 液态发酵法 | 第9页 |
| 1.4 樟芝液态发酵多糖的研究进展 | 第9-12页 |
| 1.4.1 樟芝液态发酵多糖和生物量的研究进展 | 第9-11页 |
| 1.4.2 樟芝液态发酵多糖结构的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.4.3 樟芝液态发酵多糖活性的研究进展 | 第12页 |
| 1.5 立题意义及依据 | 第12-13页 |
| 1.6 论文主要研究内容及路线 | 第13-15页 |
| 1.6.1 论文的主要研究内容 | 第13-14页 |
| 1.6.2 论文的主要研究路线 | 第14-15页 |
| 第二章 材料与方法 | 第15-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-16页 |
| 2.1.1 菌株 | 第15页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第16页 |
| 2.1.4 培养基及培养条件 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-25页 |
| 2.2.1 主要营养物质对樟芝液态发酵生物量和胞外多糖产量的影响 | 第16-17页 |
| 2.2.2 发酵条件对樟芝液态发酵生物量和胞外多糖产量的影响 | 第17-18页 |
| 2.2.3 Plackett-Burman试验设计 | 第18页 |
| 2.2.4 Box-Behnken试验设计 | 第18-19页 |
| 2.2.5 樟芝液态发酵菌球直径和生物量的测定 | 第19页 |
| 2.2.6 多糖、蛋白质和糖醛酸含量的测定 | 第19页 |
| 2.2.7 单糖组成分析 | 第19-20页 |
| 2.2.8 红外光谱分析 | 第20-21页 |
| 2.2.9 甲基化分析 | 第21-22页 |
| 2.2.10 分子量及分子构象分析 | 第22-23页 |
| 2.2.11 分子形态 | 第23页 |
| 2.2.12 体外抗氧化活性实验 | 第23-25页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第25-54页 |
| 3.1 樟芝液态发酵合成胞外多糖条件的优化 | 第25-36页 |
| 3.1.1 主要营养物质对樟芝液态发酵合成胞外多糖的影响 | 第25-28页 |
| 3.1.2 发酵条件对樟芝液态发酵合成胞外多糖的影响 | 第28-31页 |
| 3.1.3 Plackett-Burman试验设计结果及分析 | 第31-32页 |
| 3.1.4 Box-Behnken试验设计结果及分析 | 第32-36页 |
| 3.2 樟芝多糖的结构分析 | 第36-50页 |
| 3.2.1 樟芝液态发酵多糖的分离纯化 | 第36-37页 |
| 3.2.2 樟芝多糖的得率与基本组成 | 第37-39页 |
| 3.2.3 单糖组成分析 | 第39-41页 |
| 3.2.4 红外光谱分析 | 第41-42页 |
| 3.2.5 甲基化分析 | 第42-44页 |
| 3.2.6 分子量和链的构象 | 第44-47页 |
| 3.2.7 分子形态 | 第47-50页 |
| 3.3 樟芝多糖的体外抗氧化活性 | 第50-54页 |
| 3.3.1 ABTS自由基清除能力 | 第50-51页 |
| 3.3.2 羟自由基清除能力 | 第51-52页 |
| 3.3.3 DPPH自由基清除能力 | 第52-54页 |
| 主要结论与展望 | 第54-56页 |
| 主要结论 | 第54-55页 |
| 展望 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的文章 | 第62页 |
