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食品生产系统生物膜群落分析控制及Nisin-EGFP探针对G~+菌的检测

摘要第4-6页
abstract第6-7页
第一章 文献综述第12-28页
    1.1 生物膜的产生和危害第12-13页
    1.2 生物膜的生命周期第13-19页
        1.2.1 生物膜的早期粘附第14-15页
        1.2.2 生物膜的生长和成熟第15-18页
        1.2.3 生物膜的分散第18-19页
    1.3 食品生产系统中的生物膜第19-21页
    1.4 生物膜菌落结构的分析第21-23页
        1.4.1 传统方法对生物膜菌落的分析第21页
        1.4.2 基于高通量测序技术的宏基因组分析第21-23页
    1.5 生物膜的控制第23-26页
        1.5.1 物理方法对生物膜的控制第24页
        1.5.2 生物化学方法对生物膜的控制第24-26页
    1.6 生物膜的检测第26页
    1.7 本课题的研究目的和内容第26-28页
第二章 食品生产系统中生物膜菌群分析第28-62页
    2.1 实验材料第28-30页
        2.1.1 实验仪器与试剂第28-29页
        2.1.2 样品采集第29-30页
    2.2 实验方法第30-32页
        2.2.1 样品的处理和DNA的提取第30页
        2.2.2 文库的构建和Miseq测序第30页
        2.2.3 数据优化和数据统计第30页
        2.2.4 测序结果的生物信息学分析第30-32页
    2.3 实验结果与讨论第32-59页
        2.3.1 生物膜基因组DNA的提取第32页
        2.3.2 样品Miseq测序结果分析第32-33页
        2.3.3 乳品生产系统生物膜生物信息学分析第33-46页
        2.3.4 肉制品系统生物膜样品的生物信息学分析第46-59页
    2.4 讨论第59-60页
    2.5 本章小结第60-62页
第三章 基于培养基法分离食品生产系统中生物膜细菌第62-73页
    3.1 实验材料第62-64页
        3.1.1 实验仪器与药品第62-63页
        3.1.2 培养基的配制第63页
        3.1.3 实验试剂的配制第63-64页
        3.1.4 样品采集第64页
    3.2 实验方法第64-67页
        3.2.1 细菌的筛选分离第64页
        3.2.2 细菌DNA的小剂量提取第64-65页
        3.2.3 菌种的16SrDNA的序列的扩增第65-66页
        3.2.4 PCR产物的纯化第66页
        3.2.5 琼脂糖凝胶电泳第66页
        3.2.6 16SrDNA的序列测序和序列比对第66-67页
        3.2.7 生物膜形成能力的研究第67页
    3.3 实验结果与讨论第67-71页
        3.3.1 细菌的分子生物学鉴定第67-69页
        3.3.2 细菌生物膜形成能力的测定第69-71页
    3.4 讨论第71页
    3.5 本章小结第71-73页
第四章 ycbR基因编码的蛋白对大肠杆菌粘附能力的影响第73-91页
    4.1 实验材料第73-77页
        4.1.1 实验仪器与药品第73-75页
        4.1.2 实验试剂的配制第75-76页
        4.1.3 菌种和培养基的配制第76-77页
        4.1.4 实验动物第77页
    4.2 实验方法第77-83页
        4.2.1 大肠杆菌O157:H7的DNA的提取第77页
        4.2.2 ycbR基因的扩增第77-78页
        4.2.3 ycbR基因与T载体的连接第78页
        4.2.4 大肠杆菌感受态细胞的制备第78-79页
        4.2.5 大肠杆菌感受态细胞的转化第79页
        4.2.6 重组质粒的鉴定第79页
        4.2.7 pET28a-ycbR的构建第79-80页
        4.2.8 YCBR蛋白的自动诱导表达第80页
        4.2.9 聚丙烯酰胺SDS-PAGE电泳第80-81页
        4.2.10 YCBR蛋白的纯化第81页
        4.2.11 抗YCBR抗体的制备第81-82页
        4.2.12 抗YCBR抗体效价的评定第82页
        4.2.13 Westernblot实验第82-83页
        4.2.14 细胞的培养第83页
        4.2.15 抗YCBR抗体对大肠杆菌O157:H7粘附的作用第83页
        4.2.16 统计学分析第83页
    4.3 结果与讨论第83-89页
        4.3.1 ycbR基因的扩增第83-85页
        4.3.2 pET28a-ycbR表达载体的构建第85-86页
        4.3.3 YCBR蛋白的表达与纯化第86页
        4.3.4 抗YCBR抗体的制备与抗体效价的评定第86-87页
        4.3.5 Westernblot实验结果第87-88页
        4.3.6 抗YCBR抗体对大肠杆菌O157:H7粘附的影响第88-89页
    4.4 讨论第89-90页
    4.5 本章小结第90-91页
第五章 乳酸片球菌对食源性病原菌生物膜形成的生物控制第91-103页
    5.1 实验材料第91-92页
        5.1.1 实验仪器与试剂第91-92页
        5.1.2 菌种第92页
        5.1.3 培养基的配制第92页
        5.1.4 其他材料第92页
    5.2 实验方法第92-96页
        5.2.1 菌种的复苏活化第92-93页
        5.2.2 乳酸菌片球菌PA003抑菌活性的测定第93页
        5.2.3 细菌自动聚集实验第93-94页
        5.2.4 细菌表面亲疏水性和路易斯酸碱特性第94页
        5.2.5 细菌生物膜形成能力第94页
        5.2.6 细菌在无生命材料表面形成生物膜实验第94-95页
        5.2.7 乳酸片球菌PA003对生物膜形成的抑制第95页
        5.2.8 菌落的计数第95-96页
        5.2.9 数据分析第96页
    5.3 实验结果与讨论第96-101页
        5.3.1 乳酸片球菌PA003的抑菌活性第96-97页
        5.3.2 细菌自动聚集实验结果第97页
        5.3.3 细菌表面的亲疏水性和路易斯酸碱性第97-98页
        5.3.4 细菌生物膜形成能力第98-99页
        5.3.5 乳酸片球菌PA003对病原菌生物膜的抑制分析第99-101页
    5.4 讨论第101-102页
    5.5 本章小结第102-103页
第六章 nisin-EGFP荧光探针对G~+的检测第103-113页
    6.1 实验材料第103-104页
        6.1.1 实验仪器和试剂第103页
        6.1.2 菌种和培养基第103页
        6.1.3 本实验所使用的载体和引物第103-104页
    6.2 实验方法第104-107页
        6.2.1 菌种的活化培养第104-105页
        6.2.2 pET42a-spaN-egfp载体的构建第105页
        6.2.3 pET28b-spaN-egfp载体的构建第105-106页
        6.2.4 融合蛋白的表达和纯化第106页
        6.2.5 Nisin-EGFP荧光探针对革兰氏阳性菌的结合能力测定第106-107页
    6.3 结果与讨论第107-111页
        6.3.1 pET42a-spaN-egfp载体的构建第107-108页
        6.3.2 pET28b-spaN-egfp载体的构建第108-109页
        6.3.3 nisin-EGFP融合蛋白的分离纯化第109-110页
        6.3.4 nisin-EGFP荧光探针对三种G~+的结合能力测定第110-111页
    6.4 讨论第111-112页
    6.5 本章小结第112-113页
第七章 结论和展望第113-116页
    7.1 结论第113-115页
        7.1.1 对食品生产系统中的生物膜菌群进行分析第113-114页
        7.1.2 ycbR基因对大肠杆菌粘附的影响第114页
        7.1.3 乳酸片球菌PA003对生物膜的生物控制第114页
        7.1.4 Nisin-EGFP探针对G~+菌的检测第114-115页
    7.2 论文的创新点第115页
    7.3 展望第115-116页
参考文献第116-125页
发表论文和参加科研情况说明第125-126页
致谢第126-127页

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