| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 缩略语 | 第16-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-31页 |
| 1 研究问题的由来 | 第18-19页 |
| 2 龙眼核多酚抗氧化功能成分的研究现状 | 第19-20页 |
| 3 抗氧化活性评价的经典方法 | 第20-24页 |
| 3.1 体外化学评价 | 第20-21页 |
| 3.2 动物模型 | 第21页 |
| 3.3 细胞模型 | 第21-24页 |
| 4 生物传感技术在生物活性成分筛选方面的应用 | 第24-29页 |
| 4.1 量热式生物传感器 | 第25-27页 |
| 4.2 微电子阻抗传感器 | 第27-29页 |
| 5 本研究的目的意义及主要内容 | 第29-31页 |
| 5.1 本研究的目的与意义 | 第29页 |
| 5.2 本研究的主要内容 | 第29-31页 |
| 第二章 龙眼核多酚的提取及分离纯化 | 第31-45页 |
| 前言 | 第31-32页 |
| 1 材料与方法 | 第32-37页 |
| 1.1 实验材料和仪器设备 | 第32-33页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第32页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第32-33页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第33页 |
| 1.2 实验方法 | 第33-37页 |
| 1.2.1 多酚标准曲线的制备 | 第33页 |
| 1.2.2 龙眼核多酚的提取及其含量的测定 | 第33-34页 |
| 1.2.3 龙眼核多酚提取的单因素实验 | 第34-35页 |
| 1.2.4 正交试验法优化龙眼核多酚提取条件 | 第35页 |
| 1.2.5 大孔树脂静态吸附量、吸附率及解吸率的测定 | 第35-36页 |
| 1.2.6 乙醇体积分数对大孔树脂动态洗脱的影响 | 第36页 |
| 1.2.7 统计分析 | 第36-37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-44页 |
| 2.1 提取工艺的确定 | 第37-41页 |
| 2.1.1 不同提取溶剂对龙眼核多酚提取效果的影响 | 第37-38页 |
| 2.1.2 乙醇体积分数对龙眼核多酚提取效果的影响 | 第38页 |
| 2.1.3 料液比对龙眼核多酚提取效果的影响 | 第38-39页 |
| 2.1.4 提取温度对龙眼核多酚提取效果的影响 | 第39-40页 |
| 2.1.5 提取时间对龙眼核多酚提取效果的影响 | 第40-41页 |
| 2.1.6 最佳工艺条件的确定 | 第41页 |
| 2.2 四种大孔树脂对龙眼核多酚静态吸附及解吸性能的比较 | 第41-42页 |
| 2.3 乙醇体积分数对大孔树脂动态洗脱的影响 | 第42-44页 |
| 3 小结 | 第44-45页 |
| 第三章 基于敲出技术的龙眼核多酚抗氧化功能因子的筛选及初步结构表征 | 第45-68页 |
| 前言 | 第45-46页 |
| 1 材料与方法 | 第46-51页 |
| 1.1 实验材料和仪器设备 | 第46-47页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第46页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第46-47页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第47页 |
| 1.2 实验方法 | 第47-51页 |
| 1.2.1 龙眼核多酚的制备 | 第47页 |
| 1.2.2 FT-ICR?MS分析 | 第47-48页 |
| 1.2.3 HPLC?ESI?MS分析 | 第48页 |
| 1.2.4 在线敲出技术 | 第48-49页 |
| 1.2.5 抗氧化活性测定 | 第49-51页 |
| 1.2.6 统计分析 | 第51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-67页 |
| 2.1 FT-ICR?MS对龙眼核多酚结构的表征 | 第51-54页 |
| 2.2 在线筛选抗氧化功能因子 | 第54-60页 |
| 2.3 HPLC?ESI?MS分析 | 第60-67页 |
| 3 小结 | 第67-68页 |
| 第四章 龙眼核多酚抗氧化关键组分的结构鉴定及抗氧化活性的进一步确证 | 第68-106页 |
| 前言 | 第68-69页 |
| 1 材料与方法 | 第69-79页 |
| 1.1 实验材料和仪器设备 | 第69-72页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第69页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第69-71页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第71-72页 |
| 1.2 实验方法 | 第72-79页 |
| 1.2.1 龙眼核多酚抗氧化功能组分中各单体化合物的制备 | 第72-73页 |
| 1.2.2 光谱学分析 | 第73页 |
| 1.2.3 基于体外化学体系的抗氧化能力测定 | 第73-75页 |
| 1.2.4 基于细胞体系的抗氧化活性评价 | 第75-79页 |
| 1.2.5 统计分析 | 第79页 |
| 2 结果与分析 | 第79-104页 |
| 2.1 龙眼核多酚抗氧化功能组分中各单体化合物的制备 | 第79页 |
| 2.2 未知化合物的结构鉴定 | 第79-86页 |
| 2.2.1 化合物2的结构鉴定 | 第79-80页 |
| 2.2.2 化合物4的结构鉴定 | 第80-81页 |
| 2.2.3 化合物6的结构鉴定 | 第81-83页 |
| 2.2.4 化合物7的结构鉴定 | 第83-86页 |
| 2.3 基于体外化学评价方法的抗氧化活性确证 | 第86-89页 |
| 2.3.1 清除自由基的能力 | 第86-87页 |
| 2.3.2 抑制 β-胡萝卜素褪色的能力 | 第87-88页 |
| 2.3.3 抑制黄嘌呤氧化酶活性的能力 | 第88-89页 |
| 2.4 基于细胞体系的抗氧化活性确证 | 第89-104页 |
| 2.4.1 H_2O_2诱导细胞氧化损伤与凋亡模型的建立 | 第89-91页 |
| 2.4.2 龙眼核多酚对NIH-3T3细胞氧化损伤及凋亡的保护作用 | 第91-104页 |
| 3 小结 | 第104-106页 |
| 第五章 微量量热法用于多酚类抗氧化活性筛选的初探 | 第106-127页 |
| 前言 | 第106-107页 |
| 1 材料与方法 | 第107-109页 |
| 1.1 实验材料和仪器设备 | 第107-108页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第107页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第107页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第107-108页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第108页 |
| 1.2 实验方法 | 第108-109页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第108页 |
| 1.2.2 NIH-3T3细胞生长代谢的生物热测定 | 第108页 |
| 1.2.3 统计分析 | 第108-109页 |
| 2 结果与分析 | 第109-126页 |
| 2.1 NIH-3T3细胞的生物热活性指纹图谱分析 | 第109-110页 |
| 2.2 不同浓度H_2O_2对NIH-3T3细胞生长代谢产热的影响 | 第110-113页 |
| 2.3 龙眼核多酚对H_2O_2诱导的NIH-3T3细胞生长代谢产热的影响 | 第113-117页 |
| 2.4 生物热动力学模型的验证 | 第117-126页 |
| 3 小结 | 第126-127页 |
| 第六章 基于细胞微电子阻抗技术的抗氧化活性成分快速筛选方法的建立 | 第127-146页 |
| 前言 | 第127-128页 |
| 1 材料与方法 | 第128-131页 |
| 1.1 实验材料和仪器设备 | 第128-129页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第128页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第128页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第128-129页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第129页 |
| 1.2 实验方法 | 第129-131页 |
| 1.2.1 x CELLigence实时细胞分析仪基本原理 | 第129-130页 |
| 1.2.2 细胞培养 | 第130页 |
| 1.2.3 基于NIH-3T3细胞的阻抗分析方法 | 第130-131页 |
| 2 结果与分析 | 第131-145页 |
| 2.1 不同浓度H_2O_2对NIH-3T3细胞生长影响的实时阻抗检测 | 第131-134页 |
| 2.2 龙眼核多酚对H_2O_2诱导的NIH-3T3细胞生长影响的实时阻抗检测 | 第134-137页 |
| 2.3 基于AUC分析的RTCA模型的可行性验证 | 第137-145页 |
| 3 小结 | 第145-146页 |
| 第七章 结论与展望 | 第146-148页 |
| 参考文献 | 第148-169页 |
| 在读期间发表论文 | 第169-170页 |
| 致谢 | 第170-171页 |
