| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 绪论 | 第8-17页 |
| 1.1 食品安全现状 | 第8-9页 |
| 1.2 纳米科学与纳米技术 | 第9页 |
| 1.3 贵金属纳米材料及其在生物传感器构建中的应用 | 第9-12页 |
| 1.3.1 金纳米颗粒及其在生物传感器构建中的应用 | 第9-10页 |
| 1.3.2 银纳米棱镜及其在生物传感器构建中的应用 | 第10-11页 |
| 1.3.3 金、银双金属纳米材料及其在生物传感器构建中的应用 | 第11-12页 |
| 1.4 酶联免疫分析检测技术 | 第12-13页 |
| 1.5 表面拉曼增强技术 | 第13-15页 |
| 1.6 本课题的立题意义和主要研究内容 | 第15-17页 |
| 1.6.1 本课题的立题意义 | 第15-16页 |
| 1.6.2 本课题的主要研究内容 | 第16-17页 |
| 第二章 葡萄串样纳米粒子（Botryoid-shaped nanoparticles，BSNPs）的制备与表征 | 第17-23页 |
| 2.1 引言 | 第17-18页 |
| 2.2 材料与设备 | 第18页 |
| 2.2.1 主要试剂与材料 | 第18页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-19页 |
| 2.3.1 银纳米棱镜的制备 | 第18页 |
| 2.3.2 葡萄串样纳米粒子（Botryoid-shaped nanoparticles，BSNPs）的制备 | 第18-19页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第19-22页 |
| 2.4.1 葡萄串样纳米粒子（Botryoid-shaped nanoparticles，BSNPs）制备原理 | 第19页 |
| 2.4.2 葡萄串样纳米粒子（Botryoid-shaped nanoparticles，BSNPs）的表征 | 第19-22页 |
| 2.5 本章小结 | 第22-23页 |
| 第三章 基于BSNPs检测OTA的ELISA方法的建立 | 第23-34页 |
| 3.1 引言 | 第23-24页 |
| 3.2 材料与设备 | 第24-25页 |
| 3.2.1 主要试剂与材料 | 第24页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第24页 |
| 3.2.3 主要溶液 | 第24-25页 |
| 3.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 3.3.1 BSNPs的制备 | 第25页 |
| 3.3.2 IgG-HRP偶联物的制备 | 第25页 |
| 3.3.3 BSNPs-IgG-HRP偶联物的制备 | 第25页 |
| 3.3.4 包被抗原OTA-OVA的制备 | 第25-26页 |
| 3.3.5 基于BSNPs检测OTA的ELISA方法的建立与优化 | 第26-27页 |
| 3.3.6 添加回收实验 | 第27页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第27-32页 |
| 3.4.1 IgG-HRP偶联物的鉴定 | 第27页 |
| 3.4.2 BSNPs-IgG-HRP偶联物的鉴定 | 第27-28页 |
| 3.4.3 包被抗原OTA-OVA的鉴定 | 第28-29页 |
| 3.4.4 基于BSNPs检测OTA的ELISA方法的建立与优化 | 第29-31页 |
| 3.4.5 BSNPs增强的ELISA方法与传统ELISA方法的比较 | 第31-32页 |
| 3.4.6 添加回收实验 | 第32页 |
| 3.5 本章小结 | 第32-34页 |
| 第四章 基于BSNPs检测PSA的ELISA方法的建立 | 第34-42页 |
| 4.1 引言 | 第34页 |
| 4.2 材料与设备 | 第34-35页 |
| 4.2.1 主要试剂与材料 | 第34-35页 |
| 4.2.2 主要仪器与设备 | 第35页 |
| 4.2.3 主要溶液 | 第35页 |
| 4.3 实验方法 | 第35-37页 |
| 4.3.1 BSNPs的制备 | 第35页 |
| 4.3.2 金纳米颗粒（GNPs）的制备 | 第35页 |
| 4.3.3 PSA2 | 第35-36页 |
| 4.3.4 BSNPs-PSA2 | 第36页 |
| 4.3.5 BSNPs和GNPs增强的ELISA方法的建立和优化 | 第36-37页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第37-41页 |
| 4.4.1 GNPs的表征 | 第37页 |
| 4.4.2 PSA2 | 第37页 |
| 4.4.3 BSNPs-PSA2 | 第37-38页 |
| 4.4.4 基于BSNPs检测PSA的ELISA方法的建立和优化 | 第38-39页 |
| 4.4.5 BSNPs增强的ELISA方法与GNPs增强的ELISA、传统ELISA方法的比较 | 第39-41页 |
| 4.5 本章小结 | 第41-42页 |
| 第五章 基于BSNPs的表面拉曼增强基底的制备及应用 | 第42-49页 |
| 5.1 引言 | 第42-43页 |
| 5.2 材料与设备 | 第43页 |
| 5.2.1 主要试剂与材料 | 第43页 |
| 5.2.2 主要仪器与设备 | 第43页 |
| 5.3 实验方法 | 第43-44页 |
| 5.3.1 BSNPs的制备 | 第43页 |
| 5.3.2 表面拉曼增强基底的制备及优化 | 第43页 |
| 5.3.3 把 4-ATP作为信标分子验证表面拉曼增强基底的活性 | 第43-44页 |
| 5.3.4 基于BSNPs检测福美双的表面拉曼增强光谱方法的建立 | 第44页 |
| 5.3.5 苹果皮中福美双的添加回收实验 | 第44页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第44-48页 |
| 5.4.1 表面拉曼增强基底的制备及优化 | 第44-45页 |
| 5.4.2 4-ATP作为信标分子对表面拉曼增强基底的验证 | 第45-46页 |
| 5.4.3 基于BSNPs检测福美双的表面拉曼增强光谱方法的建立 | 第46-48页 |
| 5.4.4 苹果皮中福美双的添加回收实验 | 第48页 |
| 5.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 主要结论与展望 | 第49-50页 |
| 主要结论 | 第49页 |
| 展望 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第58页 |
