| 内容提要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 综述 | 第12-31页 |
| 1 多糖研究概况 | 第12-13页 |
| 2 多糖的结构分类 | 第13-15页 |
| 3 多糖的生物活性 | 第15-20页 |
| 4 多糖生物活性的构效关系 | 第20-22页 |
| 5 多糖的分子修饰 | 第22-26页 |
| 6 真菌多糖研究进展 | 第26-30页 |
| 7 展望 | 第30-31页 |
| 材料与方法 | 第31-40页 |
| 结果与分析 | 第40-70页 |
| 1 巴西革耳深层发酵研究 | 第40-45页 |
| 1．1 发酵培养基的筛选 | 第40-43页 |
| 1．2 发酵条件试验 | 第43-45页 |
| 2 巴西革耳菌丝体营养成分分析 | 第45-46页 |
| 3 巴西革耳菌丝体多糖热水浸提最佳条件的确立 | 第46-48页 |
| 4 巴西革耳多糖的分离纯化 | 第48-50页 |
| 4．1 DEAE-纤维素柱层析 | 第48-49页 |
| 4．2 SephadexG-100柱层析 | 第49-50页 |
| 5 巴西革耳多糖的纯度鉴定 | 第50-52页 |
| 5．1 SephadexG-200柱层析 | 第50-51页 |
| 5．2 旋光测定法 | 第51-52页 |
| 5．3 醋酸纤维薄膜电泳 | 第52页 |
| 6 巴西革耳多糖的理化性质测定 | 第52-56页 |
| 6．1 物理性质 | 第52-53页 |
| 6．2 分子量测定 | 第53-54页 |
| 6．3 多糖LS-Ⅰ、LS-Ⅱ-b的单糖组分分析 | 第54-56页 |
| 6．3．1 TLC分析 | 第54页 |
| 6．3．2 GC分析 | 第54-56页 |
| 7 巴西革耳多糖的结构分析 | 第56-62页 |
| 7．1 UV分析 | 第56-57页 |
| 7．2 旋光度测定 | 第57页 |
| 7．3 IR分析 | 第57-58页 |
| 7．4 高碘酸氧化与Smith降解 | 第58-59页 |
| 7．5 ~1H-NMR、~（13）C-NMR分析 | 第59-62页 |
| 8 巴西革耳多糖的分子修饰 | 第62-65页 |
| 8．1 硫酸化多糖的制备 | 第62-63页 |
| 8．2 分子量测定 | 第63页 |
| 8．3 UV分析 | 第63-64页 |
| 8．4 IR分析 | 第64-65页 |
| 8．5 ~（13）C-NMR分析 | 第65页 |
| 9 巴西革耳多糖急性毒性试验 | 第65-66页 |
| 10 巴西革耳多糖免疫活性研究 | 第66-70页 |
| 10．1 对小鼠免疫器官重量的影响 | 第66-67页 |
| 10．2 对正常及环磷酰胺（CY）小鼠体重及外周血白细胞数的影响 | 第67页 |
| 10．3 静注碳粒廓清速率 | 第67-68页 |
| 10．4 对小鼠血清溶菌酶活性的影响 | 第68-70页 |
| 小结与讨论 | 第70-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 缩略词表 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |