| 致谢 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-26页 |
| 1.1 表面活性剂 | 第14-17页 |
| 1.1.1 生物表面活性剂概述 | 第14-15页 |
| 1.1.2 生物表面活性剂的种类 | 第15-16页 |
| 1.1.3 生物表面活性剂应用 | 第16-17页 |
| 1.2 鼠李糖脂概述 | 第17-20页 |
| 1.2.1 鼠李糖脂的性质及结构 | 第17-18页 |
| 1.2.2 鼠李糖脂生产菌株 | 第18-19页 |
| 1.2.3 生物合成途径 | 第19-20页 |
| 1.3 鼠李糖脂研究现状 | 第20-24页 |
| 1.3.1 培养基对鼠李糖脂发酵的影响 | 第20-21页 |
| 1.3.2 鼠李糖脂发酵工艺 | 第21-22页 |
| 1.3.3 鼠李糖脂的分离纯化方法 | 第22-23页 |
| 1.3.4 鼠李糖脂的定量方法 | 第23页 |
| 1.3.5 鼠李糖脂的应用 | 第23-24页 |
| 1.4 本文的研究思路和内容 | 第24-26页 |
| 第二章 铜绿假单胞菌Zs1产鼠李糖脂摇瓶发酵优化 | 第26-49页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 材料和仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.1 发酵菌株 | 第26页 |
| 2.2.2 材料与试剂 | 第26页 |
| 2.2.3 主要培养基 | 第26-27页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.3.1 种子液培养方法 | 第27页 |
| 2.3.2 摇瓶培养方法 | 第27页 |
| 2.3.3 测定方法 | 第27-28页 |
| 2.3.4 实验步骤与设计 | 第28-30页 |
| 2.4 结果与分析 | 第30-47页 |
| 2.4.1 单因素实验结果 | 第30-41页 |
| 2.4.2 Plackett-Burman实验显著因素结果与分析 | 第41-43页 |
| 2.4.3 最陡爬坡实验 | 第43-44页 |
| 2.4.4 Box-Behnke优化 | 第44-47页 |
| 2.4.5 摇瓶发酵鼠李糖脂最佳产量的验证 | 第47页 |
| 2.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第三章 铜绿假单胞菌Zs1在7.5L发酵罐中的发酵工艺优化 | 第49-60页 |
| 3.1 前言 | 第49页 |
| 3.2 材料和仪器 | 第49页 |
| 3.2.1 发酵菌株 | 第49页 |
| 3.2.2 材料与试剂 | 第49页 |
| 3.2.3 主要培养基 | 第49页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第49页 |
| 3.3 实验方法 | 第49-51页 |
| 3.3.1 种子液培养方法 | 第49-50页 |
| 3.3.2 发酵罐准备及发酵方法 | 第50页 |
| 3.3.3 测定方法 | 第50页 |
| 3.3.4 发酵动力学模型的构建 | 第50-51页 |
| 3.4 结果与分析 | 第51-59页 |
| 3.4.1 搅拌转速和通气量对鼠李糖脂产量的影响 | 第51-53页 |
| 3.4.2 间歇发酵结果 | 第53-55页 |
| 3.4.3 发酵动力学模型 | 第55-59页 |
| 3.5 本章小结 | 第59-60页 |
| 第四章 鼠李糖脂的粗提及其理化性质的研究 | 第60-66页 |
| 4.1 前言 | 第60页 |
| 4.2 材料和仪器 | 第60页 |
| 4.2.1 发酵菌株 | 第60页 |
| 4.2.2 材料与试剂 | 第60页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第60页 |
| 4.3 实验方法 | 第60-61页 |
| 4.3.1 鼠李糖脂的提取与纯化 | 第60-61页 |
| 4.3.2 临界胶束浓度的测定 | 第61页 |
| 4.3.3 鼠李糖脂稳定性的研究 | 第61页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第61-64页 |
| 4.4.1 鼠李糖脂和SDS的临界胶束浓度CMC | 第61-62页 |
| 4.4.2 温度对鼠李糖脂稳定性的影响 | 第62-63页 |
| 4.4.3 盐度对鼠李糖脂稳定性的影响 | 第63-64页 |
| 4.4.4 酸碱度对鼠李糖脂稳定性的影响 | 第64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-66页 |
| 第五章 结论与展望 | 第66-69页 |
| 5.1 结论 | 第66-67页 |
| 5.2 展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-78页 |
| 作者简介 | 第78页 |
| 在校期间所取的科研成果 | 第78页 |