| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 文献综述 | 第7-16页 |
| 1.1 厚叶海带fucoidan概述 | 第7-9页 |
| 1.2 褐藻多糖硫酸酯结构分析 | 第9-10页 |
| 1.3 褐藻多糖硫酸酯降解方法研究进展 | 第10-13页 |
| 1.4 低分子量褐藻多糖硫酸酯生物活性及应用 | 第13-15页 |
| 1.5 低分子量褐藻多糖硫酸酯的研究趋势 | 第15-16页 |
| 第二章 褐藻多糖硫酸酯的降解及纯化 | 第16-26页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第16页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第16页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第16页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-18页 |
| 2.2.1 褐藻多糖硫酸酯F-2 酸水解 | 第16-17页 |
| 2.2.2 总糖含量的测定——苯酚硫酸法 | 第17页 |
| 2.2.3 硫酸根含量测定——明胶BaCl2法 | 第17页 |
| 2.2.4 单糖组成测定 | 第17-18页 |
| 2.2.5 红外光谱分析 | 第18页 |
| 2.2.6 核磁共振波谱分析 | 第18页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第18-26页 |
| 2.3.1 褐藻多糖硫酸酯F-2 酸水解 | 第18-19页 |
| 2.3.2 降解产物组分的理化性质 | 第19-20页 |
| 2.3.3 降解产物组分的单糖组成 | 第20-22页 |
| 2.3.4 红外光谱分析 | 第22-24页 |
| 2.3.5 核磁共振波谱分析 | 第24-26页 |
| 第三章 褐藻多糖硫酸酯水解产物抗肿瘤活性研究 | 第26-33页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第26页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第26页 |
| 3.1.2 实验细胞 | 第26页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第26页 |
| 3.1.4 实验仪器 | 第26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 3.2.1 试剂配制 | 第26-27页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第27页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第27-33页 |
| 3.3.1 各组分对肝癌HEPG2细胞的抑制活性 | 第27-28页 |
| 3.3.2 各组分对乳腺癌MCF-7 细胞的抑制活性 | 第28-29页 |
| 3.3.3 各组分对宫颈癌Hela细胞的抑制活性 | 第29-30页 |
| 3.3.4 各组分对人肺癌A549细胞的抑制活性 | 第30页 |
| 3.3.5 各组分对人结肠癌HT29细胞的抑制活性 | 第30-31页 |
| 3.3.6 各组分对小鼠腹腔巨噬细胞RAW264.7 细胞的抑制活性 | 第31-33页 |
| 第四章 褐藻多糖硫酸酯水解产物对RAW264.7 分泌因子TNF-α 和GM-CSF的影响 | 第33-38页 |
| 4.1 实验材料和仪器 | 第33页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第33页 |
| 4.2 实验方法 | 第33-34页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第34-38页 |
| 4.3.1 Fucoidan水解产物对巨噬细胞RAW264.7 增殖活性影响 | 第34页 |
| 4.3.2 Fucoidan水解产物对RAW264.7 分泌TNF-α 的影响 | 第34-35页 |
| 4.3.3 Fucoidan水解产物对RAW264.7 分泌GM-CSF的影响 | 第35-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-47页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第47-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
