| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 黑果茶藨的概述 | 第9-10页 |
| 1.1.1 黑果茶藨的形态特征 | 第9页 |
| 1.1.2 黑果茶藨的成分及营养价值 | 第9页 |
| 1.1.3 黑果茶藨的药用价值 | 第9页 |
| 1.1.4 黑果茶藨的应用 | 第9-10页 |
| 1.2 花色苷的概述 | 第10-12页 |
| 1.2.1 花色苷的结构和性质 | 第10页 |
| 1.2.2 花色苷的生理活性功能 | 第10页 |
| 1.2.3 影响花色苷稳定性的因素 | 第10-11页 |
| 1.2.4 花色苷抗氧化性研究 | 第11-12页 |
| 1.2.5 应用中花色苷存在的问题 | 第12页 |
| 1.3 花色苷的提取方法 | 第12-14页 |
| 1.3.1 有机溶剂提取花色苷 | 第12-13页 |
| 1.3.2 超临界流体提取花色苷 | 第13页 |
| 1.3.3 超声辅助提取花色苷 | 第13-14页 |
| 1.3.4 匀浆法提取花色苷 | 第14页 |
| 1.3.5 微波辅助提取花色苷 | 第14页 |
| 1.4 花色苷的纯化方法 | 第14-15页 |
| 1.4.1 薄层层析（TLC） | 第14-15页 |
| 1.4.2 柱色谱 | 第15页 |
| 1.4.3 高速逆流色谱法（HSCCC） | 第15页 |
| 1.5 研究的目的及意义 | 第15-16页 |
| 2 黑果茶藨果渣中花色苷的含量测定方法的建立 | 第16-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第16页 |
| 2.1.1 原料及标品 | 第16页 |
| 2.1.2 试剂 | 第16页 |
| 2.1.3 仪器 | 第16页 |
| 2.2 HPLC分析条件的确定 | 第16-21页 |
| 2.2.1 对照品储备液配制 | 第16-17页 |
| 2.2.2 检测波长的确定 | 第17页 |
| 2.2.3 流动相的选择 | 第17页 |
| 2.2.4 标准曲线的绘制 | 第17-20页 |
| 2.2.5 方法的精密度考察 | 第20页 |
| 2.2.6 重现性考察 | 第20-21页 |
| 2.2.7 供试品的稳定性考察 | 第21页 |
| 2.3 本章小结 | 第21-22页 |
| 3 匀浆-微波辅助提取黑果茶藨果渣中花色苷 | 第22-36页 |
| 3.1 试剂和材料 | 第22-24页 |
| 3.1.1 单因素实验 | 第22-23页 |
| 3.1.2 Plackett-Burman design(PBD)实验设计 | 第23页 |
| 3.1.3 Box-Behnken design(BBD)法实验优化 | 第23-24页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第24-34页 |
| 3.2.1 单因素实验 | 第24-30页 |
| 3.2.2 Plackett-Burman design（PBD） | 第30-31页 |
| 3.2.3 Box-Behnken design（BBD） | 第31-34页 |
| 3.3 本章小结 | 第34-36页 |
| 4 高速逆流色谱法(HSCCC) 分离黑果茶藨果渣中花色苷 | 第36-42页 |
| 4.1 实验仪器、材料及试剂 | 第36页 |
| 4.1.1 仪器设备 | 第36页 |
| 4.1.2 材料及试剂 | 第36页 |
| 4.2 实验方法 | 第36-37页 |
| 4.2.1 溶剂体系的选择 | 第36-37页 |
| 4.2.2 高速逆流色谱法分离纯化条件优化 | 第37页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第37-41页 |
| 4.3.1 溶剂系统 | 第37-38页 |
| 4.3.2 HSCCC分离条件优化 | 第38-39页 |
| 4.3.3 HSCCC法进一步分离鉴定黑果茶藨果渣中花色苷 | 第39-41页 |
| 4.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
