| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-29页 |
| 1.1 麦角固醇 | 第13-16页 |
| 1.1.1 麦角固醇的性质及用途 | 第13-14页 |
| 1.1.2 麦角固醇的生产方法 | 第14页 |
| 1.1.2.1 发酵法生产麦角固醇 | 第14页 |
| 1.1.2.2 从废菌丝体中提取麦角固醇 | 第14页 |
| 1.1.3 麦角固醇的提取工艺 | 第14-16页 |
| 1.1.3.1 细胞的破碎 | 第15页 |
| 1.1.3.2 麦角固醇的萃取和结晶 | 第15-16页 |
| 1.2 壳聚糖和甲壳素 | 第16-20页 |
| 1.2.1 壳聚糖和甲壳素的结构及性质 | 第16-17页 |
| 1.2.2 甲壳素和壳聚糖的制备方法 | 第17-18页 |
| 1.2.2.1 以虾蟹壳为原料的制备方法 | 第17页 |
| 1.2.2.2 以蝇蛹壳为原料的制备工艺 | 第17-18页 |
| 1.2.2.3 以发酵菌体为原料提取壳聚糖的工艺 | 第18页 |
| 1.2.3 甲壳素脱乙酰化原理及方法 | 第18-20页 |
| 1.2.3.1 甲壳素脱乙酰化原理 | 第19页 |
| 1.2.3.2 甲壳素脱乙酰化的方法 | 第19-20页 |
| 1.2.4 壳聚糖的应用 | 第20页 |
| 1.3 含盐有机废水处理研究进展 | 第20-24页 |
| 1.3.1 含盐有机废水的来源 | 第20-21页 |
| 1.3.2 生物法处理高盐废水的研究现状 | 第21-22页 |
| 1.3.3 嗜盐菌研究现状 | 第22-24页 |
| 1.3.3.1 嗜盐菌的分类 | 第22-23页 |
| 1.3.3.2 嗜盐菌的生理特性与嗜嘈盐机制 | 第23页 |
| 1.3.3.3 高盐废水对生物处理的影响 | 第23-24页 |
| 1.4 β-胡萝卜素 | 第24-26页 |
| 1.4.1 β-胡萝卜素的性质 | 第24页 |
| 1.4.2 β-胡萝卜素功能及应用 | 第24-25页 |
| 1.4.3 β-胡萝卜素的发酵法生产 | 第25-26页 |
| 1.5 选题依据和研究内容 | 第26-29页 |
| 1.5.1 选题依据 | 第26页 |
| 1.5.2 论文研究思路 | 第26-29页 |
| 第二章 从青霉菌丝体中分离提取麦角固醇 | 第29-45页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-35页 |
| 2.2.1 原料和设备 | 第29-31页 |
| 2.2.2 分析方法 | 第31-33页 |
| 2.2.2.1 吸光度法测定麦角固醇的含量 | 第31-32页 |
| 2.2.2.2 液相法测定麦角固醇含量 | 第32-33页 |
| 2.2.3 醇碱皂化法单因素实验 | 第33页 |
| 2.2.3.1 碱浓度对提取的影响 | 第33页 |
| 2.2.3.2 乙醇浓度对提取的影响 | 第33页 |
| 2.2.3.3 提取温度对提取的影响 | 第33页 |
| 2.2.3.4 提取时间对提取的影响 | 第33页 |
| 2.2.3.5 固液比对提取的影响 | 第33页 |
| 2.2.4 正交实验对提取条件的优化 | 第33-34页 |
| 2.2.5 萃取条件的确定 | 第34页 |
| 2.2.5.1 萃取溶剂的选择 | 第34页 |
| 2.2.5.2 萃取温度的确定 | 第34页 |
| 2.2.5.3 萃取剂用量的确定 | 第34页 |
| 2.2.5.4 萃取级数的确定 | 第34页 |
| 2.2.6 麦角固醇结晶条件的确定 | 第34-35页 |
| 2.3 实验结果 | 第35-43页 |
| 2.3.1 碱浓度对提取的影响 | 第35页 |
| 2.3.2 乙醇浓度对提取的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.3 皂化时间对提取的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.4 皂化温度对提取的影响 | 第37页 |
| 2.3.5 固液比对提取的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.6 正交实验对麦角固醇提取条件的优化 | 第38-40页 |
| 2.3.7 萃取条件的确定 | 第40-42页 |
| 2.3.7.1 萃取溶剂的选择 | 第40页 |
| 2.3.7.2 萃取温度的选择 | 第40-41页 |
| 2.3.7.3 萃取剂用量的选择 | 第41页 |
| 2.3.7.4 萃取级数的确定 | 第41-42页 |
| 2.3.8 麦角固醇结晶条件的确定 | 第42-43页 |
| 2.4 小结 | 第43-45页 |
| 第三章 顶头孢霉菌丝体细胞壁的制备 | 第45-61页 |
| 3.1 引言 | 第45-46页 |
| 3.2 试剂和仪器 | 第46页 |
| 3.3 实验方法 | 第46-48页 |
| 3.3.1 碱法脱蛋白单因素实验 | 第46-47页 |
| 3.3.1.1 碱液浓度的影响 | 第47页 |
| 3.3.1.2 温度的影响 | 第47页 |
| 3.3.1.3 时间的影响 | 第47页 |
| 3.3.1.4 固液比的影响 | 第47页 |
| 3.3.2 酸液预处理对碱法除蛋白的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.2.1 酸液浓度的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.2.2 浸泡时间的影响 | 第48页 |
| 3.3.3 中心组合实验设计对碱液破壁的优化 | 第48页 |
| 3.4 分析方法 | 第48-49页 |
| 3.4.1 蛋白质溶出物的测定 | 第48-49页 |
| 3.4.2 细胞壁得率的测定 | 第49页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第49-59页 |
| 3.5.1 碱法破壁除蛋白的结果 | 第49-52页 |
| 3.5.1.1 碱液浓度的影响 | 第49-50页 |
| 3.5.1.2 温度的影响 | 第50-51页 |
| 3.5.1.3 时间的影响 | 第51-52页 |
| 3.5.1.4 固液比的影响 | 第52页 |
| 3.5.2 酸预处理对破壁的影响 | 第52-54页 |
| 3.5.2.1 盐酸浓度影响 | 第52-53页 |
| 3.5.2.2 浸泡时间的影响 | 第53-54页 |
| 3.5.3 中心组合实验设计对碱液破壁的优化 | 第54-59页 |
| 3.5.3.1 回归模型的建立 | 第54-56页 |
| 3.5.3.2 各效应分析 | 第56-59页 |
| 3.5.3.3 回归模型的验证 | 第59页 |
| 3.6 小结 | 第59-61页 |
| 第四章 从顶头孢霉菌丝体细胞壁中提取壳聚糖 | 第61-75页 |
| 4.1 基本原理 | 第61-62页 |
| 4.2 实验材料 | 第62-63页 |
| 4.2.1 仪器与设备 | 第62-63页 |
| 4.2.2 试剂 | 第63页 |
| 4.3 实验方法 | 第63-65页 |
| 4.3.1 实验流程 | 第63页 |
| 4.3.2 碱法脱乙酰单因素实验 | 第63-64页 |
| 4.3.2.1 碱液浓度的影响 | 第63页 |
| 4.3.2.2 处理温度的影响 | 第63-64页 |
| 4.3.2.3 处理时间的影响 | 第64页 |
| 4.3.2.4 固液比的影响 | 第64页 |
| 4.3.3 碱法脱乙酰的响应面实验 | 第64页 |
| 4.3.4 酸提取条件的确定 | 第64-65页 |
| 4.3.4.1 酸种类的影响 | 第64页 |
| 4.3.4.2 酸浓度的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.4.3 酸处理时间的影响 | 第65页 |
| 4.3.4.4 酸处理温度的影响 | 第65页 |
| 4.4 分析方法 | 第65-67页 |
| 4.4.1 壳聚糖脱乙酰度的测定 | 第65-66页 |
| 4.4.2 壳聚糖粘度的测定 | 第66页 |
| 4.4.3 壳聚糖纯度的测定 | 第66页 |
| 4.4.4 红外光谱分析 | 第66-67页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第67-73页 |
| 4.5.1 碱法脱乙酰单因素实验 | 第67-69页 |
| 4.5.1.1 碱液浓度的影响 | 第67页 |
| 4.5.1.2 温度对壳聚糖得率的影响 | 第67-68页 |
| 4.5.1.3 提取时间对壳聚糖得率的影响 | 第68页 |
| 4.5.1.4 固液比对壳聚糖得率的影响 | 第68-69页 |
| 4.5.2 碱法脱乙酰的响应面实验 | 第69-71页 |
| 4.5.3 酸提取条件的确定 | 第71-72页 |
| 4.5.3.1 酸种类和浓度的影响 | 第71页 |
| 4.5.3.2 酸处理时间和温度的影响 | 第71-72页 |
| 4.5.4 壳聚糖产品的表征 | 第72-73页 |
| 4.5.4.1 壳聚糖脱乙酰度 | 第72-73页 |
| 4.5.4.2 壳聚糖红外表征 | 第73页 |
| 4.6 小结 | 第73-75页 |
| 第五章 细胞破碎液培养粘红酵母生产β-胡萝卜素 | 第75-93页 |
| 5.1 引言 | 第75页 |
| 5.2 材料与方法 | 第75-78页 |
| 5.2.1 菌种及培养基 | 第75页 |
| 5.2.2 菌种纯化及驯化 | 第75-76页 |
| 5.2.3 生物量测定方法 | 第76页 |
| 5.2.4 β-胡萝卜素提取方法 | 第76页 |
| 5.2.5 β-胡萝卜素测定方法 | 第76-77页 |
| 5.2.5.1 吸光度法 | 第76页 |
| 5.2.5.2 高效液相色谱法 | 第76-77页 |
| 5.2.6 总氮测定方法 | 第77-78页 |
| 5.2.7 COD测定方法 | 第78页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第78-90页 |
| 5.3.1 粘红酵母的纯化和驯化 | 第78-79页 |
| 5.3.2 合成培养基发酵条件的确定 | 第79-83页 |
| 5.3.2.1 碳源对粘红酵母生长和产β-胡萝卜素的影响 | 第79-80页 |
| 5.3.2.2 氮源对粘红酵母生长和产β-胡萝卜素的影响 | 第80-81页 |
| 5.3.2.3 初始pH值对粘红酵母生长和产β-胡萝卜素的影响 | 第81页 |
| 5.3.2.4 温度对粘红酵母生长和产β-胡萝卜素的影响 | 第81-82页 |
| 5.3.2.5 接种量对粘红酵母生长和产β-胡萝卜素的影响 | 第82页 |
| 5.3.2.6 培养时间对粘红酵母生长和产β-胡萝卜素的影响 | 第82-83页 |
| 5.3.2 废水培养基发酵条件的确定 | 第83-90页 |
| 5.3.2.1 葡萄糖浓度的确定 | 第84-86页 |
| 5.3.2.2 废水初始COD的确定 | 第86-87页 |
| 5.3.2.3 初始pH值浓度的确定 | 第87-88页 |
| 5.3.2.4 温度的确定 | 第88-89页 |
| 5.3.2.5 接种量的确定 | 第89-90页 |
| 5.4 小结 | 第90-93页 |
| 第六章 结论及展望 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-101页 |
| 致谢 | 第101-103页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第103-104页 |
| 硕士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第104-105页 |
