| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第11-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-30页 |
| 1.1 脱臭馏出物简介 | 第16-18页 |
| 1.1.1 脱臭馏出物概述及研究情况 | 第16页 |
| 1.1.2 山茶油脱臭馏出物主要成分和研究现状 | 第16-18页 |
| 1.2 角鲨烯 | 第18-25页 |
| 1.2.1 角鲨烯理化性质 | 第18-19页 |
| 1.2.2 角鲨烯的分布 | 第19-23页 |
| 1.2.3 角鲨烯的生物学功效 | 第23-24页 |
| 1.2.4 角鲨烯的应用前景 | 第24-25页 |
| 1.3 角鲨烯的检测及分离方法研究 | 第25-26页 |
| 1.3.1 角鲨烯的检测方法 | 第25页 |
| 1.3.2 角鲨烯的提取纯化方法 | 第25-26页 |
| 1.4 Ⅱ型糖尿病简介 | 第26-27页 |
| 1.4.1 Ⅱ型糖尿病的发病原因及危害 | 第27页 |
| 1.4.2 Ⅱ型糖尿病的治疗方法 | 第27页 |
| 1.5 本文研究的依据、意义和主要内容 | 第27-30页 |
| 1.5.1 研究依据 | 第27-28页 |
| 1.5.2 研究目的与意义 | 第28页 |
| 1.5.3 研究的主要内容 | 第28-29页 |
| 1.5.4 研究的创新点 | 第29-30页 |
| 第二章 山茶油脱臭馏出物理化指标及成分分析 | 第30-38页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 材料试剂和仪器 | 第30-31页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第30页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.3.1 角鲨烯气相测定 | 第31-32页 |
| 2.3.2 日内精密度与日间精密度 | 第32页 |
| 2.3.3 山茶油脱臭馏出物理化指标 | 第32页 |
| 2.3.4 山茶油脱臭馏出物脂肪酸测定 | 第32-33页 |
| 2.3.5 统计学方法 | 第33页 |
| 2.4 实验结果 | 第33-37页 |
| 2.4.1 角鲨烯气相检测结果分析 | 第33-35页 |
| 2.4.2 日内精密度与日间精密度结果分析 | 第35-36页 |
| 2.4.3 山茶油脱臭馏出物理化指标结果分析 | 第36-37页 |
| 2.4.4 山茶油脱臭馏出物脂肪酸组成分析 | 第37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 山茶油脱臭馏出物中角鲨烯的分离纯化 | 第38-54页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 材料试剂和仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.2 主要实验仪器 | 第39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-42页 |
| 3.3.1 皂化法初步分离角鲨烯 | 第39页 |
| 3.3.2 单因素及正交实验优化 | 第39-41页 |
| 3.3.3 洗脱剂选择 | 第41页 |
| 3.3.4 硅胶柱纯化 | 第41页 |
| 3.3.5 GC-MS对角鲨烯纯化物纯度的检测 | 第41-42页 |
| 3.3.6 统计学方法 | 第42页 |
| 3.4 实验结果 | 第42-53页 |
| 3.4.1 单因素分析 | 第42-45页 |
| 3.4.2 正交实验结果分析 | 第45-46页 |
| 3.4.3 洗脱剂选择 | 第46-48页 |
| 3.4.4 角鲨烯的纯化结果分析 | 第48-52页 |
| 3.4.5 角鲨烯纯化物纯度分析 | 第52-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 第四章 茶油角鲨烯纯化物抗氧化作用的研究 | 第54-65页 |
| 4.1 引言 | 第54页 |
| 4.2 材料试剂与仪器 | 第54-55页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第54-55页 |
| 4.2.2 主要实验仪器 | 第55页 |
| 4.3 实验方法 | 第55-59页 |
| 4.3.1 清除DPPH·活性测定 | 第55页 |
| 4.3.2 清除羟自由基活性测定 | 第55-56页 |
| 4.3.3 对猪油的抗氧化作用研究 | 第56-58页 |
| 4.3.4 统计学方法 | 第58-59页 |
| 4.4 实验结果 | 第59-64页 |
| 4.4.1 清除DPPH·测定结果 | 第59页 |
| 4.4.2 清除羟自由基测定结果 | 第59-60页 |
| 4.4.3 猪油抗氧化结果 | 第60-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-65页 |
| 第五章 茶油角鲨烯纯化物对细胞糖代谢作用初探 | 第65-78页 |
| 5.1 引言 | 第65页 |
| 5.2 材料试剂与仪器 | 第65-66页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第65-66页 |
| 5.2.2 主要实验仪器 | 第66页 |
| 5.3 实验方法 | 第66-70页 |
| 5.3.1 细胞实验基础操作 | 第66-67页 |
| 5.3.2 IR-HepG2细胞模型的建立 | 第67-68页 |
| 5.3.3 SP样品对细胞葡萄糖消耗量和细胞活力的影响 | 第68页 |
| 5.3.4 SP样品对细胞糖原含量的影响 | 第68-69页 |
| 5.3.5 SP样品对细胞糖原合成酶及葡萄糖-6-磷酸酶活性的影响 | 第69页 |
| 5.3.6 SP样品对细胞TG含量及细胞形态的影响 | 第69-70页 |
| 5.3.7 SP样品对细胞中MDA含量和SOD活性的影响 | 第70页 |
| 5.3.8 统计学方法 | 第70页 |
| 5.4 实验结果 | 第70-76页 |
| 5.4.1 不同浓度PA作用HepG2细胞后对葡萄糖消耗量及细胞活力的影响 | 第70-71页 |
| 5.4.2 SP样品对细胞葡萄糖消耗量和细胞活力的影响 | 第71-72页 |
| 5.4.3 SP样品对细胞糖原含量的影响 | 第72-73页 |
| 5.4.4 SP样品对细胞糖原合成酶及葡萄糖-6-磷酸酶活性的影响 | 第73-74页 |
| 5.4.5 SP样品对细胞TG含量及细胞形态的影响 | 第74-75页 |
| 5.4.6 SP样品对细胞中MDA含量和SOD活性的影响 | 第75-76页 |
| 5.5 本章小结 | 第76-78页 |
| 第六章 结论与展望 | 第78-81页 |
| 6.1 结论 | 第78-79页 |
| 6.2 展望 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-89页 |
| 作者简介 | 第89页 |
