| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第10-21页 |
| 1.1 虫草属真菌概况 | 第10页 |
| 1.2 古尼虫草的研究概述 | 第10-13页 |
| 1.2.1 古尼虫草的生物学特性 | 第10-11页 |
| 1.2.2 古尼虫草化学成分研究 | 第11-12页 |
| 1.2.3 古尼虫草的药理作用 | 第12-13页 |
| 1.3 硒的研究概述 | 第13-16页 |
| 1.3.1 硒的分布及存在形式 | 第13页 |
| 1.3.2 硒对人体健康的影响 | 第13-14页 |
| 1.3.3 人体硒的需要量 | 第14页 |
| 1.3.4 富硒产品的开发与研究现状 | 第14-16页 |
| 1.4 硒多糖的研究概况 | 第16-19页 |
| 1.4.1 硒多糖的种类和来源 | 第16-17页 |
| 1.4.2 硒多糖的提取、分离和纯化 | 第17页 |
| 1.4.3 硒多糖的结构 | 第17-18页 |
| 1.4.4 硒多糖的生物活性 | 第18-19页 |
| 1.5 研究的目的、意义及主要内容 | 第19-21页 |
| 1.5.1 研究目的和意义 | 第19-20页 |
| 1.5.2 研究的主要内容 | 第20-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-37页 |
| 2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第21-24页 |
| 2.1.1 实验菌种 | 第21页 |
| 2.1.2 实验药品和试剂 | 第21-23页 |
| 2.1.3 实验仪器和设备 | 第23-24页 |
| 2.1.4 培养基 | 第24页 |
| 2.2 培养方法 | 第24页 |
| 2.2.1 菌株活化 | 第24页 |
| 2.2.2 种子液培养 | 第24页 |
| 2.2.3 液体摇床发酵培养 | 第24页 |
| 2.3 分析和测定方法 | 第24-28页 |
| 2.3.1 菌丝体生物量的测定 | 第24页 |
| 2.3.2 硒含量测定和富硒率的计算 | 第24-26页 |
| 2.3.3 古尼虫草菌丝体有效成分分析 | 第26-28页 |
| 2.4 古尼虫草菌耐硒特征实验 | 第28-29页 |
| 2.4.1 古尼虫草菌固体培养耐硒实验 | 第28-29页 |
| 2.4.2 古尼虫草菌液体培养耐硒实验 | 第29页 |
| 2.4.3 生长曲线的测定 | 第29页 |
| 2.5 富硒古尼虫草菌液体发酵条件的优化 | 第29-30页 |
| 2.5.1 液体发酵中营养条件的优化 | 第29-30页 |
| 2.5.2 液体发酵过程中环境条件的优化 | 第30页 |
| 2.6 CCPS-Ⅱ和SeCPS-Ⅱ的结构分析 | 第30-34页 |
| 2.6.1 菌丝体多糖提取 | 第30页 |
| 2.6.2 多糖的分子量分布 | 第30-31页 |
| 2.6.3 多糖的分离纯化 | 第31页 |
| 2.6.4 多糖的纯度鉴定 | 第31页 |
| 2.6.5 多糖的比旋光度测定 | 第31-32页 |
| 2.6.6 多糖的红外光谱分析 | 第32页 |
| 2.6.7 多糖的核磁共振分析 | 第32页 |
| 2.6.8 多糖的单糖组成分析 | 第32-33页 |
| 2.6.9 高碘酸氧化和Smith降解分析 | 第33页 |
| 2.6.10 多糖的刚果红试验 | 第33-34页 |
| 2.6.11 多糖的X射线衍射分析 | 第34页 |
| 2.7 CCPS-Ⅱ和SeCPS-Ⅱ的体外抗氧化活性研究 | 第34-37页 |
| 2.7.1 主要试剂和溶液的配制 | 第34-35页 |
| 2.7.2 羟自由基(·OH)清除能力的测定 | 第35页 |
| 2.7.3 超氧阴离子自由基(O~(2-)·)清除能力的测定 | 第35-36页 |
| 2.7.4 DPPH自由基清除能力测定 | 第36页 |
| 2.7.5 ABTS自由基清除能力测定 | 第36-37页 |
| 3 结果与讨论 | 第37-66页 |
| 3.1 古尼虫草菌耐硒特征实验 | 第37-40页 |
| 3.1.1 古尼虫草菌固体培养耐硒实验 | 第37-39页 |
| 3.1.2 古尼虫草菌液体发酵耐硒实验 | 第39-40页 |
| 3.1.3 液体发酵生长曲线实验 | 第40页 |
| 3.2 富硒古尼虫草液体发酵条件研究 | 第40-48页 |
| 3.2.1 发酵过程中营养条件对富硒率和生物量的影响 | 第40-46页 |
| 3.2.2 发酵过程中环境条件对富硒率和生物量的影响 | 第46-47页 |
| 3.2.3 最佳发酵条件下富硒古尼虫草摇瓶发酵实验 | 第47-48页 |
| 3.3 生物富硒对古尼虫草菌化学成分的影响 | 第48-50页 |
| 3.3.1 多糖含量分析 | 第48-49页 |
| 3.3.2 菌丝体营养成分比较 | 第49页 |
| 3.3.3 菌丝体功效成分比较 | 第49-50页 |
| 3.4 多糖的纯化和结构分析 | 第50-62页 |
| 3.4.1 多糖的提取和纯化 | 第50-51页 |
| 3.4.2 多糖含量测定 | 第51页 |
| 3.4.3 多糖纯度的鉴定 | 第51页 |
| 3.4.4 多糖的分子量测定 | 第51-53页 |
| 3.4.5 多糖的硒含量测定 | 第53页 |
| 3.4.6 多糖的比旋光度分析 | 第53页 |
| 3.4.7 多糖的红外光谱分析 | 第53-55页 |
| 3.4.8 多糖的核磁共振图谱分析 | 第55-57页 |
| 3.4.9 多糖的单糖组成分析 | 第57-58页 |
| 3.4.10 CCPS-Ⅱ和SeCPS-Ⅱ连接方式分析 | 第58-61页 |
| 3.4.11 刚果红试验 | 第61-62页 |
| 3.4.12 多糖的X射线衍射分析 | 第62页 |
| 3.5 CCPS-Ⅱ和SeCPS-Ⅱ的体外抗氧化活性实验结果 | 第62-66页 |
| 3.5.1 对羟自由基(·OH)的清除 | 第62-63页 |
| 3.5.2 对超氧阴离子自由基(O~(2-)·)的清除 | 第63页 |
| 3.5.3 对DPPH自由基的清除 | 第63-64页 |
| 3.5.4 对ABTS自由基的清除 | 第64-66页 |
| 4 结论 | 第66-67页 |
| 5 展望 | 第67-68页 |
| 6 参考文献 | 第68-76页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第76-77页 |
| 8 致谢 | 第77页 |
