| 摘要 | 第13-15页 |
| Abstract | 第15-16页 |
| 本文主要缩略词 | 第17-18页 |
| 1 前言 | 第18-27页 |
| 1.1 鲍鱼资源概述 | 第18页 |
| 1.2 鲍鱼内脏概述 | 第18-19页 |
| 1.3 海洋动物多糖的研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3.1 多糖的提取 | 第19-20页 |
| 1.3.2 多糖的脱色 | 第20页 |
| 1.3.3 多糖的除蛋白 | 第20页 |
| 1.3.4 多糖的分离 | 第20页 |
| 1.4 海洋动物多糖的化学组成研究 | 第20-23页 |
| 1.4.1 化学组成分析 | 第21页 |
| 1.4.2 单糖组成分析 | 第21-22页 |
| 1.4.3 多糖的纯度鉴定 | 第22页 |
| 1.4.4 多糖的结构分析 | 第22-23页 |
| 1.5 多糖的生物活性研究 | 第23-25页 |
| 1.5.1 多糖的抗氧化活性 | 第23-24页 |
| 1.5.2 多糖的抑菌活性活性 | 第24页 |
| 1.5.3 多糖的免疫调节作用 | 第24-25页 |
| 1.6 本论文的研究内容及研究意义 | 第25-27页 |
| 2 实验材料与方法 | 第27-40页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 仪器 | 第28-29页 |
| 2.3 试验方法 | 第29-40页 |
| 2.3.1 实验材料前处理 | 第29-30页 |
| 2.3.2 鲍鱼内脏不同部位多糖得率的测定 | 第30-31页 |
| 2.3.3 最适蛋白酶的选择 | 第31-32页 |
| 2.3.4 碱性蛋白酶单因素实验 | 第32页 |
| 2.3.5 碱性蛋白酶正交实验 | 第32页 |
| 2.3.6 鲍鱼内脏粗多糖的抗氧化活性检测 | 第32-33页 |
| 2.3.6.1 清除羟自由基能力的检测 | 第32页 |
| 2.3.6.2 还原能力的检测 | 第32页 |
| 2.3.6.3 清除ABTS自由基能力的检测 | 第32-33页 |
| 2.3.7 双酶解提取鲍鱼内脏多糖 | 第33页 |
| 2.3.8 鲍鱼内脏粗多糖的纯化 | 第33页 |
| 2.3.9 鲍鱼内脏多糖急性毒理试验 | 第33-34页 |
| 2.3.10 AVP结构分析 | 第34-36页 |
| 2.3.10.1 AVP过柱分离 | 第34页 |
| 2.3.10.2 AVP紫外光谱 | 第34页 |
| 2.3.10.3 AVP红外光谱 | 第34页 |
| 2.3.10.4 AVP核磁检测 | 第34页 |
| 2.3.10.5 AVP组成成分分析 | 第34-36页 |
| 2.3.10.6 AVP单糖组成分析 | 第36页 |
| 2.3.11 AVP对细菌的抑制作用 | 第36页 |
| 2.3.12 AVP对蘑菇酪氨酸酶活力研究 | 第36-37页 |
| 2.3.12.1 酪氨酸酶二酚酶活力分析 | 第36页 |
| 2.3.12.2 酪氨酸酶单酚酶活力分析 | 第36页 |
| 2.3.12.3 产物累积全波长扫描 | 第36-37页 |
| 2.3.12.4 排除AVP为酪氨酸酶底物的实验 | 第37页 |
| 2.3.13 AVP对胃癌MGC-803细胞的增殖抑制作用 | 第37-38页 |
| 2.3.13.1 胃癌细胞培养 | 第37页 |
| 2.3.13.2 MTT法测定胃癌细胞增殖抑制率 | 第37-38页 |
| 2.3.13.3 胃癌细胞形态学观察 | 第38页 |
| 2.3.13.4 胃癌MGC-803细胞划痕实验 | 第38页 |
| 2.3.13.5 胃癌MGC-803细胞AO/EB染色 | 第38页 |
| 2.3.13.6 胃癌MGC-803细胞Western blotting实验 | 第38页 |
| 2.3.14 数据分析 | 第38-40页 |
| 3 实验结果 | 第40-73页 |
| 3.1 鲍鱼内脏多糖的提取纯化 | 第40-50页 |
| 3.1.1 鲍鱼内脏不同部位的多糖得率 | 第40页 |
| 3.1.2 鲍鱼内脏酶解的最适蛋白酶的选择 | 第40-41页 |
| 3.1.3 碱性蛋白酶酶解鲍鱼内脏单因素实验 | 第41-43页 |
| 3.1.4 碱性蛋白酶酶解鲍鱼内脏正交实验 | 第43-45页 |
| 3.1.5 碱性蛋白酶酶解鲍鱼内脏粗多糖的抗氧化活性 | 第45-46页 |
| 3.1.6 双酶解提取鲍鱼内脏多糖 | 第46-47页 |
| 3.1.7 双酶解鲍鱼内脏多糖的抗氧化活性 | 第47-48页 |
| 3.1.8 过氧化氢脱除鲍鱼内脏多糖色素 | 第48-50页 |
| 3.1.9 鲍鱼内脏多糖急性毒理试验 | 第50页 |
| 3.2 AVP结构分析 | 第50-58页 |
| 3.2.1 AVP过柱分离 | 第50-51页 |
| 3.2.2 AVP各组分紫外光谱 | 第51-53页 |
| 3.2.3 AVP各组分红外光谱 | 第53-54页 |
| 3.2.4 AVP紫外光谱 | 第54-55页 |
| 3.2.5 AVP红外光谱 | 第55-56页 |
| 3.2.6 AVP核磁共振碳谱 | 第56-57页 |
| 3.2.7 AVP组成成分分析 | 第57-58页 |
| 3.2.8 AVP单糖组成分析 | 第58页 |
| 3.3 AVP的抑菌作用 | 第58-59页 |
| 3.4 AVP对蘑菇酪氨酸酶酶活力分析 | 第59-65页 |
| 3.4.1 酪氨酸酶二酚酶激活活力分析 | 第59-60页 |
| 3.4.2 产物累积全波长扫描 | 第60-61页 |
| 3.4.3 酪氨酸酶单酚酶抑制活力分析 | 第61-62页 |
| 3.4.4 产物累积全波长扫描 | 第62-63页 |
| 3.4.5 排除AVP为酪氨酸酶底物的实验 | 第63-65页 |
| 3.5 AVP对胃癌MGC-803细胞的增殖抑制机理 | 第65-73页 |
| 3.5.1 MTT法检测AVP对胃癌细胞的增殖抑制率 | 第65-66页 |
| 3.5.2 胃癌细胞形态学观察 | 第66-68页 |
| 3.5.3 胃癌MGC-803细胞划痕实验 | 第68页 |
| 3.5.4 胃癌MGC-803细胞AO/EB实验 | 第68-69页 |
| 3.5.5 胃癌MGC-803细胞Western blotting实验 | 第69-73页 |
| 3.5.5.1 AVP对胃癌MGC-803细胞凋亡相关蛋白Bcl-2和Bax表达量的影响 | 第69-70页 |
| 3.5.5.2 AVP对胃癌MGC-803细胞凋亡相关蛋白survivin、VEGF表达量的影响 | 第70页 |
| 3.5.5.3 AVP对胃癌MGC-803细胞凋亡相关蛋白p53表达量的影响 | 第70-71页 |
| 3.5.5.4 AVP对胃癌MGC-803细胞凋亡相关蛋白PCNA表达量的影响 | 第71页 |
| 3.5.5.5 AVP对胃癌MGC-803细胞MMP2蛋白表达量的影响 | 第71-72页 |
| 3.5.5.6 AVP对胃癌MGC-803细胞Wnt2蛋白表达量的影响 | 第72-73页 |
| 4 讨论 | 第73-76页 |
| 5 结论 | 第76-78页 |
| 6 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-86页 |
| 在学期间发表论文及会议摘要 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
