| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 产胞外多糖的乳酸菌 | 第10页 |
| 1.2 乳酸菌所产的EPS的种类 | 第10-11页 |
| 1.2.1 乳酸菌胞外多糖研究概况 | 第11页 |
| 1.3 多糖的分离纯化 | 第11-13页 |
| 1.3.1 多糖的乙醇沉淀法 | 第12页 |
| 1.3.2 多糖的色谱分离纯化法 | 第12-13页 |
| 1.4 多糖的结构与活性的构效关系 | 第13-14页 |
| 1.4.1 多糖的一级结构对活性的影响 | 第13页 |
| 1.4.2 多糖高级结构对活性的影响 | 第13-14页 |
| 1.5 乳酸菌EPS功能特性 | 第14-16页 |
| 1.5.1 乳酸菌EPS的物理学特性 | 第14页 |
| 1.5.2 乳酸菌EPS的生理学特性 | 第14-16页 |
| 1.6 乳酸菌胞外多糖的应用 | 第16-17页 |
| 1.6.1 乳酸菌EPS作为发酵食品的增稠剂 | 第16-17页 |
| 1.6.2 产EPS的乳酸菌菌株作为发酵剂 | 第17页 |
| 1.7 本课题的研究意义和内容 | 第17-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第19页 |
| 2.1.2 实验试剂与药品 | 第19-20页 |
| 2.1.3 实验主要仪器 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-27页 |
| 2.2.1 实验培养基 | 第20-21页 |
| 2.2.2 乳酸菌的筛选 | 第21页 |
| 2.2.3 海产品中产胞外多糖乳杆菌的筛选 | 第21页 |
| 2.2.4 多糖含量的测定 | 第21-22页 |
| 2.2.5 粗多糖的提取 | 第22页 |
| 2.2.6 乳酸杆菌及胞外多糖抗氧化性测定 | 第22-23页 |
| 2.2.7 胞外多糖对E.coli的抑制黏附作用 | 第23-24页 |
| 2.2.8 多糖对E.coli诱导HT-29细胞分泌IL-8和IL-10的影响 | 第24页 |
| 2.2.9 胞外多糖的分离纯化 | 第24-25页 |
| 2.2.10 多糖的分子量测定 | 第25-26页 |
| 2.2.11 纯化后两多糖组分的抗氧化测定 | 第26页 |
| 2.2.12 数据分析 | 第26-27页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第27-38页 |
| 3.1 乳杆菌的筛选 | 第27-28页 |
| 3.2 产胞外多糖的乳杆菌的筛选 | 第28-29页 |
| 3.3 粗多糖的提取与含量测定 | 第29页 |
| 3.3.1 乙醇沉淀法提取粗多糖 | 第29页 |
| 3.3.2 粗多糖中总糖和蛋白含量的测定 | 第29页 |
| 3.5 乳酸杆菌菌株及其多糖的抗氧化活性 | 第29-31页 |
| 3.5.1 菌体抗氧化测定 | 第29-30页 |
| 3.5.2 乳酸菌胞外多糖的抗氧化活性 | 第30-31页 |
| 3.6 多糖抑制E.coli粘附作用 | 第31-32页 |
| 3.7 多糖抑制E.coli诱导HT-29细胞分泌IL-8和IL-10 | 第32页 |
| 3.8 多糖的DEAE-Sepharose Fast Flow离子柱纯化 | 第32-33页 |
| 3.9 组分EPS2的Sepharose CL-6B凝胶柱纯化 | 第33-34页 |
| 3.10 组分EPS2的凝胶柱纯化 | 第34-35页 |
| 3.10.1 组分EPS1经Sephacryl HR S200凝胶柱 | 第34-35页 |
| 3.10.2 组分EPS1经Sepharose CL-6B凝胶柱纯化 | 第35页 |
| 3.11 多糖的分子量测定 | 第35-36页 |
| 3.12 纯化后两组分的抗氧化性 | 第36-38页 |
| 第四章 结论 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 附录 | 第47-48页 |
