| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 黑木耳简介 | 第13页 |
| 1.2 黑木耳的研究现状 | 第13-15页 |
| 1.2.1 国内研究现状 | 第13-14页 |
| 1.2.2 国外研究现状 | 第14-15页 |
| 1.3 黑木耳多糖提取方法的研究 | 第15-17页 |
| 1.3.1 物理辅助方法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 强电场技术提取法 | 第16页 |
| 1.3.3 酶法辅助提取方法 | 第16-17页 |
| 1.3.4 超微粉碎辅助提取方法 | 第17页 |
| 1.4 多糖的改性研究现状 | 第17-18页 |
| 1.4.1 国内研究现状 | 第17页 |
| 1.4.2 国外研究现状 | 第17-18页 |
| 1.5 黑木耳多糖生理功能及活性的研究现状 | 第18-19页 |
| 1.5.1 黑木耳多糖的抗氧化活性 | 第18页 |
| 1.5.2 黑木耳多糖的降血脂活性 | 第18页 |
| 1.5.3 黑木耳多糖的抗肿瘤活性 | 第18-19页 |
| 1.5.4 黑木耳多糖抗疲劳的作用 | 第19页 |
| 1.6 研究的内容及意义 | 第19-20页 |
| 1.6.1 研究的内容 | 第19页 |
| 1.6.2 研究的意义 | 第19-20页 |
| 2 碱提黑木耳多糖的工艺优化 | 第20-26页 |
| 2.1 材料与设备 | 第20页 |
| 2.1.1 材料 | 第20页 |
| 2.1.2 设备 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 葡糖糖标准曲线的制作 | 第20-21页 |
| 2.2.2 原料的预处理 | 第21页 |
| 2.2.3 多糖提取工艺流程 | 第21页 |
| 2.2.4 正交实验 | 第21-22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22-26页 |
| 2.3.1 葡萄糖标准曲线 | 第22页 |
| 2.3.2 单因素实验结果 | 第22-24页 |
| 2.3.3 正交实验结果 | 第24页 |
| 2.3.4 结论 | 第24-26页 |
| 3 响应曲面分析法优化蜗牛酶提取黑木耳多糖工艺 | 第26-36页 |
| 3.1 材料与设备 | 第26页 |
| 3.1.1 材料 | 第26页 |
| 3.1.2 设备 | 第26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 3.2.1 黑木耳粉的制备 | 第26页 |
| 3.2.2 黑木耳多糖的提取 | 第26页 |
| 3.2.3 单因素实验设计 | 第26-27页 |
| 3.2.4 响应面实验设计 | 第27页 |
| 3.2.5 葡萄糖标准曲线的制作 | 第27页 |
| 3.2.6 多糖含量的测定 | 第27-28页 |
| 3.2.7 数据处理 | 第28页 |
| 3.3 结果与分析 | 第28-35页 |
| 3.3.1 葡萄糖标准曲线 | 第28页 |
| 3.3.2 单因素实验 | 第28-30页 |
| 3.3.3 响应曲面提取条件的优化 | 第30-35页 |
| 3.4 结论 | 第35-36页 |
| 4 二次回归正交组合设计优化乙酰化黑木耳多糖的制备工艺 | 第36-46页 |
| 4.1 材料与设备 | 第36-37页 |
| 4.1.1 材料 | 第36-37页 |
| 4.1.2 设备 | 第37页 |
| 4.2 实验方法 | 第37-40页 |
| 4.2.1 黑木耳多糖的提取 | 第37-38页 |
| 4.2.2 乙酰化黑木耳多糖的制备 | 第38页 |
| 4.2.3 二次回归正交组合设计实验 | 第38页 |
| 4.2.4 乙酰取代度的测定方法 | 第38-39页 |
| 4.2.5 单因素实验 | 第39-40页 |
| 4.2.6 红外光谱检测 | 第40页 |
| 4.2.7 数据处理分析方法 | 第40页 |
| 4.3 结果与分析 | 第40-45页 |
| 4.3.1 乙酰基最大吸收波长的确定 | 第40页 |
| 4.3.2 乙酰基标准曲线 | 第40-41页 |
| 4.3.3 单因素及二次回归组合正交实验 | 第41-42页 |
| 4.3.4 二次回归组合正交实验设计及结果 | 第42-44页 |
| 4.3.5 乙酰化黑木耳多糖与原多糖的红外光谱分析结果 | 第44-45页 |
| 4.4 结论 | 第45-46页 |
| 5 乙酰化黑木耳多糖的分离纯化及结构鉴定 | 第46-59页 |
| 5.1 材料与设备 | 第46页 |
| 5.1.1 材料 | 第46页 |
| 5.1.2 设备 | 第46页 |
| 5.2 实验方法 | 第46-48页 |
| 5.2.1 DEAE-52纤维素柱分离纯化 | 第46-47页 |
| 5.2.2 葡聚糖凝胶G-75柱纯化 | 第47页 |
| 5.2.3 乙酰化黑木耳多糖的结构表征 | 第47-48页 |
| 5.3 结果与分析 | 第48-58页 |
| 5.3.1 DEAE-52纤维素柱分离纯化结果 | 第48-49页 |
| 5.3.2 葡聚糖凝胶纯化结果 | 第49-51页 |
| 5.3.3 红外光谱结果 | 第51-56页 |
| 5.3.4 刚果红实验 | 第56-58页 |
| 5.4 结论 | 第58-59页 |
| 6 乙酰化黑木耳多糖的抗氧化活性分析 | 第59-65页 |
| 6.1 材料与设备 | 第59页 |
| 6.1.1 材料 | 第59页 |
| 6.1.2 仪器 | 第59页 |
| 6.2 实验方法 | 第59-62页 |
| 6.2.1 样品的配置 | 第59-60页 |
| 6.2.2 样品对羟自由基(·OH)的清除作用 | 第60-61页 |
| 6.2.3 样品对超氧阴离子自由基(O_2·~-)清除能力 | 第61页 |
| 6.2.4 还原能力 | 第61-62页 |
| 6.3 结果 | 第62-64页 |
| 6.3.1 样品对羟自由基(·OH)的清除作用 | 第62-63页 |
| 6.3.2 样品对超氧阴离子自由基(O_2·~-)清除能力 | 第63-64页 |
| 6.3.3 还原能力 | 第64页 |
| 6.4 结论 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 附录 | 第72-73页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
