| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| 1 大型真菌的生物活性 | 第11-19页 |
| ·大型真菌对环境污染的修复作用 | 第11-12页 |
| ·对有色染料的脱色 | 第11-12页 |
| ·对重金属的富集 | 第12页 |
| ·大型真菌的抗菌活性 | 第12-19页 |
| ·抗革兰氏阳性细菌 | 第12-14页 |
| ·抗革兰氏阴性细菌 | 第14-15页 |
| ·抗菌化合物 | 第15-19页 |
| ·抗革兰氏阳性菌的化合物 | 第17-18页 |
| ·抗革兰氏阴性菌的化合物 | 第18-19页 |
| 2 本文研究目的及意义 | 第19-20页 |
| ·选题目的 | 第19页 |
| ·研究意义 | 第19-20页 |
| 3 本文主要研究内容 | 第20页 |
| 本研究技术路线图 | 第20-21页 |
| 第二章 脱色、抗菌功能野生大型真菌的筛选、鉴定 | 第21-33页 |
| 1 材料与方法 | 第21-24页 |
| ·材料 | 第21-23页 |
| ·菌种 | 第21-23页 |
| ·染料 | 第23页 |
| ·仪器 | 第23页 |
| ·培养基 | 第23页 |
| ·方法 | 第23-24页 |
| ·菌株的活化 | 第23页 |
| ·大型真菌的液体发酵 | 第23页 |
| ·脱色功能野生大型真菌的筛选 | 第23页 |
| ·脱色成分的硫酸铵沉淀 | 第23-24页 |
| ·抗菌功能野生大型真菌的筛选 | 第24页 |
| ·功能菌株的鉴定 | 第24页 |
| 2 结果与分析 | 第24-31页 |
| ·野生大型真菌的脱色活性 | 第24-25页 |
| ·脱色成分盐析分离的最佳硫酸铵饱和度范围 | 第25-27页 |
| ·野生大型真菌的抗菌活性 | 第27-29页 |
| ·0612-9和0331功能菌株的鉴定 | 第29-31页 |
| 3 小结与讨论 | 第31-33页 |
| 第三章 Cerrena sp.菌株对孔雀石绿的脱色条件 | 第33-39页 |
| 1 材料 | 第33页 |
| ·菌种 | 第33页 |
| ·试剂 | 第33页 |
| ·培养基 | 第33页 |
| 2 方法 | 第33-34页 |
| ·液体发酵培养基碳、氮源优化 | 第33页 |
| ·菌株活化及种子液的制备 | 第33页 |
| ·碳源的优化 | 第33页 |
| ·氮源的优化 | 第33页 |
| ·反应条件的优化 | 第33-34页 |
| ·反应温度 | 第33页 |
| ·pH | 第33-34页 |
| ·孔雀石绿初始浓度 | 第34页 |
| ·金属离子 | 第34页 |
| ·脱色时间 | 第34页 |
| ·正交试验优化组合 | 第34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-38页 |
| ·发酵培养基碳、氮源对孔雀石绿染料脱色效果的影响 | 第34-35页 |
| ·不同碳源对染料脱色的影响 | 第34-35页 |
| ·不同氮源对染料脱色的影响 | 第35页 |
| ·不同反应条件对孔雀石绿染料脱色效果的影响 | 第35-38页 |
| ·温度对脱色率的影响 | 第35页 |
| ·pH值对脱色率的影响 | 第35-36页 |
| ·孔雀石绿初始浓度对脱色率的影响 | 第36页 |
| ·金属离子对脱色率的影响 | 第36-37页 |
| ·不同脱色时间对脱色率的影响 | 第37页 |
| ·脱色条件的最优组合 | 第37-38页 |
| ·最优条件下Cerrena sp.对孔雀石绿染料的脱色效果 | 第38页 |
| 4 小结与讨论 | 第38-39页 |
| 第四章 Cerrena sp.和Gymnopus sp.发酵生产抗菌物质的工艺 | 第39-58页 |
| 1 材料与方法 | 第39-42页 |
| ·材料 | 第39-40页 |
| ·菌种 | 第39页 |
| ·培养基 | 第39-40页 |
| ·方法 | 第40-42页 |
| ·菌株的一级发酵(种子制备) | 第40页 |
| ·液体发酵培养基组成优化 | 第40-41页 |
| ·Cerrena sp.摇瓶发酵条件优化 | 第41-42页 |
| ·Gymnopus sp.摇瓶发酵条件正交试验 | 第42页 |
| ·最佳发酵工艺验证试验 | 第42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-56页 |
| ·Cerrena sp.最优发酵工艺 | 第42-51页 |
| ·最优发酵培养基组成 | 第42-47页 |
| ·最适培养条件 | 第47-51页 |
| ·验证最佳发酵工艺 | 第51页 |
| ·Gymnopus sp.菌株最优摇瓶发酵工艺 | 第51-56页 |
| ·发酵培养基最佳碳、氮源 | 第51-52页 |
| ·Plackett-Burman筛选到的显著因素 | 第52-54页 |
| ·最陡爬坡试验逼近最大响应值的响应区域 | 第54页 |
| ·中心组合设计得到的最优发酵工艺 | 第54-55页 |
| ·Gymnopus sp.摇瓶发酵条件的最优组合 | 第55-56页 |
| ·最优发酵工艺参数 | 第56页 |
| 3 小结与讨论 | 第56-58页 |
| 第五章 Gymnopus sp.发酵工艺放大及动力学研究 | 第58-66页 |
| 1 材料与方法 | 第58-60页 |
| ·材料 | 第58页 |
| ·菌种 | 第58页 |
| ·主要仪器 | 第58页 |
| ·培养基及发酵条件 | 第58页 |
| ·试验方法、步骤 | 第58-60页 |
| ·菌种活化 | 第58页 |
| ·种子液培养 | 第58-59页 |
| ·15L发酵罐发酵培养 | 第59页 |
| ·发酵过程动力学研究 | 第59页 |
| ·分析方法 | 第59-60页 |
| 2 结果与分析 | 第60-65页 |
| ·发酵液状态随发酵时间的变化 | 第60页 |
| ·葡萄糖标准曲线 | 第60-61页 |
| ·盐酸四环素的标准曲线 | 第61-62页 |
| ·发酵液中还原糖与氨基氮含量随发酵时间的变化 | 第62-63页 |
| ·发酵液中DO与pH随发酵时间的变化 | 第63页 |
| ·发酵液中菌丝体干重与效价随发酵时间的变化 | 第63-65页 |
| 3 小结与讨论 | 第65-66页 |
| 第六章 Gymnopus sp.发酵液中抗菌物质的稳定性及其初步鉴定 | 第66-73页 |
| 1 材料与方法 | 第66-68页 |
| ·材料 | 第66页 |
| ·菌种 | 第66页 |
| ·培养基 | 第66页 |
| ·试剂 | 第66页 |
| ·主要仪器 | 第66页 |
| ·方法 | 第66-68页 |
| ·抗菌物质的热稳定性测定 | 第66页 |
| ·抗菌物质的pH稳定性测定 | 第66页 |
| ·抗菌物质的UV稳定性测定 | 第66页 |
| ·液体发酵产物不同溶剂萃取组分的抗菌活性研究 | 第66-67页 |
| ·乙酸乙酯比例对发酵液抗菌活性物质提取效果的研究 | 第67页 |
| ·发酵液预处理试验 | 第67页 |
| ·发酵液乙酸乙酯萃取物的化学成分分析 | 第67-68页 |
| ·TLC法初步摸索硅胶柱层析的流动相 | 第68页 |
| 2 结果与分析 | 第68-73页 |
| ·温度对发酵液抗菌活性的影响 | 第68页 |
| ·pH对发酵液抗菌活性的影响 | 第68-69页 |
| ·UV对发酵液抗菌活性的影响 | 第69页 |
| ·发酵产物不同溶剂萃取组分的抗菌活性 | 第69-70页 |
| ·乙酸乙酯比例对发酵液抗菌活性物质的萃取效果 | 第70页 |
| ·发酵液预处理后的抗菌活性 | 第70-71页 |
| ·初步鉴定发酵液乙酸乙酯萃取物的化学成分 | 第71页 |
| ·初步摸索到的硅胶柱层析流动相 | 第71-73页 |
| 第七章 Gymnopus sp.发酵液抗菌物质的分离纯化 | 第73-83页 |
| 1 材料与方法 | 第73-75页 |
| ·材料 | 第73-74页 |
| ·供试原料与菌株 | 第73页 |
| ·培养基 | 第73页 |
| ·薄层显色剂 | 第73-74页 |
| ·主要试剂 | 第74页 |
| ·主要仪器 | 第74页 |
| ·方法 | 第74-75页 |
| ·发酵液预处理 | 第74页 |
| ·乙酸乙酯萃取活性物质 | 第74页 |
| ·乙酸乙酯萃取物的硅胶柱层析 | 第74-75页 |
| ·HPLC制备活性单体 | 第75页 |
| 2 结果与分析 | 第75-81页 |
| ·预处理发酵液萃取相的性状 | 第75页 |
| ·发酵液萃取物硅胶柱层析后的活性流分 | 第75-81页 |
| ·第一次硅胶柱层析 | 第75-76页 |
| ·第二次硅胶柱层析 | 第76-77页 |
| ·第三次硅胶柱层析 | 第77-78页 |
| ·第四次硅胶柱层析 | 第78页 |
| ·HPLC制备活性单体 | 第78-81页 |
| 3 小结与讨论 | 第81-83页 |
| 第八章 结论与展望 | 第83-84页 |
| 1 结论 | 第83页 |
| 2 展望 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第91页 |
