第一章 文献综述 | 第10-36页 |
1.1 前言 | 第10-11页 |
1.2 共轭亚油酸的异构体、来源和生理作用 | 第11-14页 |
1.2.1 共轭亚油酸的异构体及其来源 | 第11-12页 |
1.2.2 共轭亚油酸的生理活性 | 第12-14页 |
1.3 共轭亚油酸的制备方法及其衍生物的合成 | 第14-15页 |
1.3.1 共轭亚油酸的制备方法 | 第14页 |
1.3.2 共轭亚油酸衍生物的制备 | 第14-15页 |
1.4 脂肪酶的存在、结构与性质 | 第15-25页 |
1.4.1 脂肪酶的存在 | 第15-17页 |
1.4.2 脂肪酶的结构特征和催化机制 | 第17-19页 |
1.4.3 脂肪酶在生物技术方面的应用 | 第19-21页 |
1.4.4 脂肪酶的选择性 | 第21-23页 |
1.4.5 导致脂肪酶选择性的结构因素 | 第23页 |
1.4.6 影响酶选择性的因素 | 第23-24页 |
1.4.7 脂肪酶选择性的定量评价 | 第24-25页 |
1.5 非水酶学 | 第25-28页 |
1.5.1 水活度α_w | 第25-26页 |
1.5.2 水活度的控制 | 第26-28页 |
1.5.3 有机溶剂的性质 | 第28页 |
1.6 磁性载体的合成及其在固定化脂肪酶方面的应用 | 第28-34页 |
1.6.1 磁性载体的制备 | 第28-32页 |
1.6.2 磁性载体在酶固定化方面的应用 | 第32页 |
1.6.3 酶的固定化及其对活性的影响 | 第32-33页 |
1.6.4 磁介质固定化酶应用实例 | 第33-34页 |
1.7 本文工作目的与内容 | 第34-36页 |
第二章 高纯度共轭亚油酸的制备及其异构体的鉴定 | 第36-50页 |
2.1 引言 | 第36-37页 |
2.2 亚油酸富集的工艺流程 | 第37页 |
2.3 实验材料与方法 | 第37-39页 |
2.3.1 实验材料与仪器 | 第37-38页 |
2.3.2 实验方法 | 第38-39页 |
2.4 结果与讨论 | 第39-49页 |
2.4.1 各主要因素对脲包法富集亚油酸的影响 | 第39-42页 |
2.4.2 碱催化共轭化的机理 | 第42-43页 |
2.4.3 碱催化异构化反应条件的确定 | 第43-45页 |
2.4.4 CLA异构体的鉴定 | 第45-49页 |
2.5 本章小结 | 第49-50页 |
第三章 无溶剂酶促1,3-二共轭亚油酰甘油的制备 | 第50-67页 |
3.1 引言 | 第50-52页 |
3.2 材料与仪器 | 第52页 |
3.2.1 实验材料 | 第52页 |
3.2.2 仪器设备 | 第52页 |
3.3 方法 | 第52-55页 |
3.3.1 共轭亚油酸的制备和分析 | 第52-53页 |
3.3.2 试验策略的确定 | 第53-54页 |
3.3.3 固定化脂肪酶的筛选 | 第54页 |
3.3.4 样品的HPLC分析 | 第54-55页 |
3.3.5 各重要因素对反应的影响 | 第55页 |
3.4 结果与讨论 | 第55-66页 |
3.4.1 合成策略的确定 | 第55-58页 |
3.4.2 脂肪酶的筛选 | 第58-59页 |
3.4.3 水活度的在线监测与反应进程 | 第59-60页 |
3.4.4 Novozym 435在不同操作方式下催化性能的比较 | 第60-62页 |
3.4.5 反应时间的影响 | 第62-63页 |
3.4.6 反应温度的影响 | 第63-64页 |
3.4.7 酶加入量的影响 | 第64-65页 |
3.4.8 底物比例的影响 | 第65页 |
3.4.9 真空度的影响 | 第65-66页 |
3.5 本章小结 | 第66-67页 |
第四章 响应面法优化酶促1,3-DCLG的合成 | 第67-78页 |
4.1 引言 | 第67页 |
4.2 实验材料与仪器 | 第67页 |
4.3 实验设计 | 第67-68页 |
4.4 统计分析 | 第68页 |
4.5 模型验证和实验放大 | 第68页 |
4.6 模型拟合--1,3-dCLG的产率 | 第68-73页 |
4.7 模型拟合--CLA的转化率与酰基位移 | 第73-76页 |
4.8 模型验证与1, 3-dCLG合成的放大 | 第76页 |
4.9 本章小结 | 第76-78页 |
第五章 高纯度共轭亚油酸三酰甘油的无溶剂酶促合成 | 第78-90页 |
5.1 引言 | 第78页 |
5.2 材料与仪器 | 第78-79页 |
5.3 实验方法 | 第79-80页 |
5.3.1 实验操作方式的确定 | 第79页 |
5.3.2 固定化酶催化性能的比较 | 第79-80页 |
5.3.3 影响tCLG合成的重要因素 | 第80页 |
5.3.4 反应过程对脂肪酸成分的影响 | 第80页 |
5.3.5 Novozym 435的重复利用 | 第80页 |
5.4 结果与讨论 | 第80-88页 |
5.4.1 实验操作方法的确定 | 第80-82页 |
5.4.2 固定化酶催化性能的比较 | 第82-83页 |
5.4.3 反应时间的影响 | 第83-85页 |
5.4.4 反应温度的影响 | 第85页 |
5.4.5 底物比例的影响 | 第85-86页 |
5.4.6 酶加入量的影响 | 第86-87页 |
5.4.7 反应前后共轭亚油酸成分的变化 | 第87页 |
5.4.8 循环使用对酶活性的影响 | 第87-88页 |
5.5 本章小结 | 第88-90页 |
第六章 新型疏水超顺磁固定化脂肪酶的制备与表征 | 第90-110页 |
6.1 引言 | 第90-91页 |
6.2 实验材料与仪器 | 第91-92页 |
6.2.1 实验材料 | 第91页 |
6.2.2 仪器设备 | 第91-92页 |
6.3 实验方法 | 第92-95页 |
6.3.1 磁性聚醋酸乙烯酯-二乙烯苯微球的合成 | 第92页 |
6.3.2 磁性粒子和聚合物微球的表征 | 第92页 |
6.3.3 磁性微球的表面功能基化和脂肪酶的固定 | 第92-94页 |
6.3.4 载体亲水性测定 | 第94-95页 |
6.3.5 活性检测 | 第95页 |
6.3.6 动力学参数和活化能的确定 | 第95页 |
6.3.7 固定化脂肪酶的热稳定性和重复利用 | 第95页 |
6.4 结果与讨论 | 第95-109页 |
6.4.1 聚VAc-DVB磁性微球的特征 | 第95-99页 |
6.4.2 吸附时间对酶固定化的影响 | 第99-100页 |
6.4.3 修饰微球固定化酶的活性 | 第100-101页 |
6.4.4 载体亲水性对固定化酶活性的影响 | 第101-103页 |
6.4.5 固定化密度对脂肪酶活性的影响 | 第103-104页 |
6.4.6 温度对脂肪酶活性的影响及其动力学参数 | 第104-107页 |
6.4.7 pH对游离和固定化脂肪酶活性的影响 | 第107-108页 |
6.4.8 固定化酶的热稳定性和重复利用 | 第108-109页 |
6.5 本章小结 | 第109-110页 |
第七章 疏水超顺磁固定化脂肪酶催化酯化反应的特征 | 第110-124页 |
7.1 引言 | 第110页 |
7.2 实验材料和仪器 | 第110-111页 |
7.2.1 实验材料 | 第110-111页 |
7.2.2 仪器设备 | 第111页 |
7.3 实验方法 | 第111-114页 |
7.3.1 固定化脂肪酶的制备与表征 | 第111-112页 |
7.3.2 溶剂对脂肪酶活性的影响 | 第112页 |
7.3.3 不同反应体系中水活度的影响 | 第112-113页 |
7.3.4 甘油酯的无溶剂酶催化合成 | 第113页 |
7.3.5 脂肪酸和醇的选择性 | 第113-114页 |
7.3.6 温度的影响和固定化酶的可重复利用性 | 第114页 |
7.4 结果与讨论 | 第114-122页 |
7.4.1 固定化脂肪酶微球的特征 | 第114-115页 |
7.4.2 溶剂种类和疏水性的影响 | 第115-117页 |
7.4.3 水活度的影响 | 第117-118页 |
7.4.4 甘油酯的无溶剂酶催化合成 | 第118-119页 |
7.4.5 对脂肪酸与醇的选择性 | 第119-121页 |
7.4.6 温度的影响与固定化酶的重复使用 | 第121-122页 |
7.5 本章小结 | 第122-124页 |
第八章 总结与展望 | 第124-128页 |
8.1 全文总结 | 第124-125页 |
8.2 创新点 | 第125-126页 |
8.3 对今后工作的建议与展望 | 第126-128页 |
参考文献 | 第128-144页 |
攻读博士期间发表的论文 | 第144-146页 |
科技期刊论文 | 第144页 |
待发表的论文 | 第144-145页 |
正在申请中的专利 | 第145-146页 |
致 谢 | 第146页 |