| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第12-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-25页 |
| 1.1 多糖的国内外研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2 肿瘤微环境 | 第16-18页 |
| 1.3 多糖和肿瘤 | 第18-19页 |
| 1.4 多糖对肿瘤微环境的免疫调节 | 第19-22页 |
| 1.4.1 趋化因子/细胞因子 | 第20页 |
| 1.4.2 Th1/Th2平衡 | 第20-21页 |
| 1.4.3 树突状细胞 | 第21页 |
| 1.4.4 MMPs抑制剂 | 第21-22页 |
| 1.4.5 抑制肿瘤血管生成 | 第22页 |
| 1.5 本文研究的目的意义、主要内容和创新之处 | 第22-25页 |
| 1.5.1 本研究目的意义 | 第22-23页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第23-24页 |
| 1.5.3 主要创新之处 | 第24-25页 |
| 第2章 TPS对炎症相关性结肠癌小鼠模型的干预作用及机制研究 | 第25-62页 |
| 2.1 引言 | 第25-26页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第26-30页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第26页 |
| 2.2.2 实验细胞株 | 第26页 |
| 2.2.3 茶多糖的提取与制备 | 第26页 |
| 2.2.4 其它主要试剂 | 第26-28页 |
| 2.2.5 其它主要仪器设备 | 第28-30页 |
| 2.3 主要方法 | 第30-39页 |
| 2.3.1 主要试剂的配置 | 第30-32页 |
| 2.3.2 小鼠的饲养和繁殖 | 第32页 |
| 2.3.3 AOM/DSS炎症相关性结肠癌小鼠模型的建立 | 第32-33页 |
| 2.3.4 小鼠体重变化及疾病活动情况的宏观评价 | 第33页 |
| 2.3.5 CAC小鼠组织器官取材方法 | 第33-34页 |
| 2.3.6 小鼠肠组织细胞因子水平检测 | 第34页 |
| 2.3.7 病理分析检测 | 第34-37页 |
| 2.3.8 Western Blot检测小鼠结肠组织中IL-6/STAT3信号通路中相关指标蛋白表达 | 第37-39页 |
| 2.4 统计学方法 | 第39页 |
| 2.5 实验结果 | 第39-56页 |
| 2.5.1 炎症相关性结肠癌小鼠模型的构建 | 第39-40页 |
| 2.5.2 TPS对CAC小鼠大体形态学影响的观察 | 第40-42页 |
| 2.5.3 TPS对CAC小鼠生存率及体重的影响 | 第42-44页 |
| 2.5.4 TPS对CAC小鼠肠黏膜分泌细胞因子的影响 | 第44-45页 |
| 2.5.5 CAC小鼠肿瘤病理组织学检测 | 第45-46页 |
| 2.5.6 TPS对CAC小鼠结肠肿瘤微环境中免疫细胞浸润的影响 | 第46-48页 |
| 2.5.7 TPS抑制CAC小鼠结肠肿瘤细胞增殖 | 第48-49页 |
| 2.5.8 TPS促进CAC小鼠结肠肿瘤细胞凋亡 | 第49-50页 |
| 2.5.9 TPS抑制IL-6/STAT3信号通路的活性 | 第50-54页 |
| 2.5.10 Western Blot检测IL-6/STAT3信号通路及下游靶蛋白的表达情况 | 第54-56页 |
| 2.6 讨论 | 第56-61页 |
| 2.7 本章小结 | 第61-62页 |
| 第3章 TPS对小鼠结肠癌细胞株CT26增殖及凋亡的影响及作用机制 | 第62-78页 |
| 3.1 引言 | 第62-63页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第63-65页 |
| 3.2.1 实验细胞株 | 第63页 |
| 3.2.2 茶多糖的提取与制备 | 第63页 |
| 3.2.3 其它主要试剂 | 第63-64页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第64-65页 |
| 3.3 主要方法 | 第65-68页 |
| 3.3.1 主要试剂的配置 | 第65-66页 |
| 3.3.2 CT26细胞株的培养 | 第66页 |
| 3.3.3 细胞毒实验(CCK8法) | 第66页 |
| 3.3.4 细胞增殖能力检测 | 第66页 |
| 3.3.5 细胞爬片Giemsa染色 | 第66-67页 |
| 3.3.6 细胞侵袭能力检测 | 第67页 |
| 3.3.7 流式细胞仪检测凋亡率 | 第67页 |
| 3.3.8 流式细胞仪检测细胞周期 | 第67-68页 |
| 3.4 统计学方法 | 第68页 |
| 3.5 实验结果 | 第68-74页 |
| 3.5.1 TPS对小鼠结肠癌细胞株CT26的细胞毒实验 | 第68-69页 |
| 3.5.2 细胞增殖能力检测 | 第69-70页 |
| 3.5.3 细胞爬片Giemsa染色 | 第70-71页 |
| 3.5.4 细胞侵袭能力检测 | 第71-72页 |
| 3.5.5 流式细胞仪检测细胞周期及细胞凋亡 | 第72-74页 |
| 3.6 讨论 | 第74-77页 |
| 3.7 本章小结 | 第77-78页 |
| 第4章 TPS对tumor cell-Mφ共培养体系中肿瘤细胞生物学行为的影响 | 第78-94页 |
| 4.1 引言 | 第78-79页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第79-82页 |
| 4.2.1 实验细胞株 | 第79页 |
| 4.2.2 其它主要试剂 | 第79-81页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第81-82页 |
| 4.2.4 茶多糖的提取与制备 | 第82页 |
| 4.3 主要方法 | 第82-87页 |
| 4.3.1 主要试剂的配置 | 第82页 |
| 4.3.2 实时荧光定量RT-PCR | 第82-84页 |
| 4.3.3 非接触式肿瘤细胞巨噬细胞共培养体系的建立 | 第84-85页 |
| 4.3.4 TPS对炎性因子刺激条件下的共培养体系中肿瘤细胞生物学行为的影响 | 第85-86页 |
| 4.3.5 TPS对共培养体系下CT26细胞中IL-6/STAT3信号通路相关蛋白的影响 | 第86-87页 |
| 4.4 统计学方法 | 第87页 |
| 4.5 实验结果 | 第87-91页 |
| 4.5.1 TPS对炎性因子诱导下共培养体系中肿瘤细胞增殖能力的影响 | 第87-88页 |
| 4.5.2 TPS对共培养条件下肿瘤细胞侵袭能力的影响 | 第88-89页 |
| 4.5.3 实时荧光定量RT-PCR/总RNA | 第89-90页 |
| 4.5.4 TPS对共培养条件CT26细胞中STAT3磷酸化水平及其下游靶蛋白的影响 | 第90-91页 |
| 4.6 讨论 | 第91-93页 |
| 4.7 本章小结 | 第93-94页 |
| 第5章 结论与展望 | 第94-96页 |
| 5.1 本研究主要结论 | 第94-95页 |
| 5.2 进一步的研究方向 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-110页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第110页 |
