新疆阿魏菇多糖的分离纯化与结构的研究
| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语说明 | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-23页 |
| 1.1 阿魏菇概述 | 第11-12页 |
| 1.1.1 阿魏菇简介 | 第11页 |
| 1.1.2 阿魏菇的作用 | 第11页 |
| 1.1.3 PFLP 的研究现状 | 第11-12页 |
| 1.2 多糖生物活性与应用概况 | 第12-14页 |
| 1.2.1 多糖的生物活性 | 第12-13页 |
| 1.2.2 多糖的应用 | 第13-14页 |
| 1.3 多糖研究方法 | 第14-20页 |
| 1.3.1 多糖的提取 | 第14-15页 |
| 1.3.2 多糖的分离纯化 | 第15-18页 |
| 1.3.3 多糖的结构 | 第18-20页 |
| 1.4 研究目的意义及研究内容 | 第20-23页 |
| 1.4.1 目的意义 | 第20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20-22页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第22-23页 |
| 第二章 PFLP 提取工艺的研究 | 第23-33页 |
| 2.1 材料与设备 | 第23页 |
| 2.1.1 材料和试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 主要设备 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 原料的预处理 | 第23页 |
| 2.2.2 多糖提取的工艺流程 | 第23页 |
| 2.2.3 阿魏菇中多糖的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.4 传统热水浸提法 | 第24-25页 |
| 2.2.5 超声波辅助提取法 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-32页 |
| 2.3.1 葡萄糖标准曲线的测定 | 第26页 |
| 2.3.2 传统热水浸提法 | 第26-28页 |
| 2.3.3 超声波辅助提取法 | 第28-32页 |
| 2.3.4 两种提取方法的比较 | 第32页 |
| 2.4 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 阿魏菇多糖的分离纯化 | 第33-43页 |
| 3.1 材料与设备 | 第33-34页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.2 主要设备 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-38页 |
| 3.2.1 试验工艺流程 | 第34页 |
| 3.2.2 去蛋白 | 第34-35页 |
| 3.2.3 去小分子杂质 | 第35-36页 |
| 3.2.4 PFLP 的分离纯化 | 第36-37页 |
| 3.2.5 PFLP 的纯度鉴定 | 第37-38页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第38-42页 |
| 3.3.1 去蛋白 | 第38-39页 |
| 3.3.2 去小分子杂质 | 第39页 |
| 3.3.3 PFLP 的分离纯化 | 第39-41页 |
| 3.3.4 PFLP 的纯度鉴定 | 第41-42页 |
| 3.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 PFLP 结构初探 | 第43-54页 |
| 4.1 材料与设备 | 第43-44页 |
| 4.1.1 材料和试剂 | 第43页 |
| 4.1.2 主要设备 | 第43-44页 |
| 4.2 实验方法 | 第44-46页 |
| 4.2.1 多糖分子量的测定 | 第44页 |
| 4.2.2 气相色谱法测定单糖组成 | 第44-45页 |
| 4.2.3 高碘酸氧化 | 第45页 |
| 4.2.4 smith 降解及 GC 分析 | 第45页 |
| 4.2.5 多糖的红外光谱分析 | 第45-46页 |
| 4.2.6 多糖的 AFM 观测 | 第46页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第46-53页 |
| 4.3.1 分子量测定 | 第46-47页 |
| 4.3.2 气相色谱测定单糖组成 | 第47-48页 |
| 4.3.3 高碘酸氧化 | 第48-49页 |
| 4.3.4 smith 降解及 GC 分析 | 第49-52页 |
| 4.3.5 多糖的红外光谱分析 | 第52页 |
| 4.3.6 多糖的 AFM 分析 | 第52-53页 |
| 4.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 结论与展望 | 第54-56页 |
| 5.1 全文结论 | 第54页 |
| 5.2 主要创新点与意义 | 第54页 |
| 5.3 展望 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介及在学成果 | 第60-61页 |
| 附件 | 第61页 |
