| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 前言 | 第9-26页 |
| 1 农用抗生素的研究概况 | 第9页 |
| 2 抗真菌农用抗生素产生菌的开发动向 | 第9-11页 |
| 3 抗生素产生菌的诱变育种的研究概况 | 第11-23页 |
| 3．1 抗生素产生菌诱变育种的目的 | 第12-14页 |
| 3．2 抗生素产生菌诱变育种新技术研究进展 | 第14-20页 |
| 3．3 抗生素产生菌诱变育种的筛选方法 | 第20-23页 |
| 4 抗生素产生菌发酵条件优化的研究 | 第23-25页 |
| 4．1 培养基对发酵过程的影响及控制 | 第23页 |
| 4．2 温度对发酵过程的影响及控制 | 第23页 |
| 4．3 pH值对发酵过程的影响及控制 | 第23-24页 |
| 4．4 溶解氧对发酵的影响及控制 | 第24页 |
| 4．5 反应器的设计 | 第24-25页 |
| 5 本论文立题意义及研究的主要内容 | 第25-26页 |
| 第二章 山东链霉菌的鉴定及抑菌谱、抑菌机理的研究 | 第26-37页 |
| 1 材料与方法 | 第26-30页 |
| 1．1 材料 | 第26-28页 |
| 1．1．1 菌种 | 第26-27页 |
| 1．1．2 培养基 | 第27-28页 |
| 1．1．3 试剂 | 第28页 |
| 1．2 方法 | 第28-30页 |
| 1．2．1 菌体形态观察 | 第28-29页 |
| 1．2．2 菌体培养特征观察 | 第29页 |
| 1．2．3 细胞壁化学组分分析 | 第29页 |
| 1．2．4 生理生化实验 | 第29页 |
| 1．2．5 基于16S rDNA序列比较的系统发育分析 | 第29页 |
| 1．2．6 DNA杂交 | 第29-30页 |
| 1．2．7 发酵液管碟法测定抗菌谱 | 第30页 |
| 1．2．8 发酵液对真菌菌丝的影响 | 第30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-35页 |
| 2．1 形态特征观察结果 | 第30页 |
| 2．2 培养特征实验结果 | 第30-31页 |
| 2．3 菌株细胞壁化学组分分析结果 | 第31页 |
| 2．4 生理生化特征 | 第31-32页 |
| 2．5 16S rDNA序列分析结果 | 第32-33页 |
| 2．6 DNA杂交结果 | 第33页 |
| 2．7 菌种鉴定结果 | 第33页 |
| 2．8 发酵液管碟法测定抗菌谱实验结果与分析 | 第33-34页 |
| 2．9 发酵液对真菌菌丝的影响 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| 第三章 各种理化因子诱变山东链霉菌 | 第37-50页 |
| 1 材料与方法 | 第37-40页 |
| 1．1 材料 | 第37页 |
| 1．1．1 菌种 | 第37页 |
| 1．1．2 培养基 | 第37页 |
| 1．2 方法 | 第37-40页 |
| 1．2．1 菌悬液的制备 | 第37-38页 |
| 1．2．2 菌株的诱变育种 | 第38-39页 |
| 1．2．2．1 紫外线诱变 | 第38页 |
| 1．2．2．2 紫外线+氯化锂复合诱变 | 第38页 |
| 1．2．2．3 ~(60)Co诱变 | 第38-39页 |
| 1．2．2．4 硫酸二乙酯诱变 | 第39页 |
| 1．2．3 高产菌株的筛选 | 第39-40页 |
| 1．2．3．1 菌株的初筛 | 第39页 |
| 1．2．3．2 菌株的复筛 | 第39-40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-48页 |
| 2．1 山东链霉菌紫外线诱变结果 | 第40-43页 |
| 2．1．1 紫外线诱变致死率 | 第40-41页 |
| 2．1．2 紫外线诱变菌株的筛选结果 | 第41页 |
| 2．1．3 氯化锂助诱变作用 | 第41-42页 |
| 2．1．4 紫外线+氯化锂复合诱变菌株筛选结果 | 第42-43页 |
| 2．2 山东链霉菌~(60)Co诱变结果 | 第43-45页 |
| 2．2．1 ~(60)Co诱变的致死率与正突变率 | 第43-44页 |
| 2．2．2 ~(60)Co诱变菌株的筛选结果 | 第44-45页 |
| 2．3 山东链霉菌硫酸二乙酯诱变结果 | 第45-47页 |
| 2．3．1 硫酸二乙酯诱变的致死率与正突变率 | 第45-46页 |
| 2．3．2 硫酸二乙酯诱变菌株的筛选 | 第46-47页 |
| 2．4 各种诱变剂诱变效果评价 | 第47-48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| 第四章 诱变菌株的原生质体融合 | 第50-59页 |
| 1 材料与方法 | 第50-54页 |
| 1．1 材料 | 第50-51页 |
| 1．1．1 菌种 | 第50页 |
| 1．1．2 培养基 | 第50-51页 |
| 1．1．3 试剂 | 第51页 |
| 1．2 方法 | 第51-54页 |
| 1．2．1 孢子悬液的制备 | 第51-52页 |
| 1．2．2 菌体的培养 | 第52页 |
| 1．2．3 原生质体的分离 | 第52页 |
| 1．2．4 原生质体的再生 | 第52页 |
| 1．2．5 亲本的灭活 | 第52-53页 |
| 1．2．6 原生质体融合 | 第53页 |
| 1．2．7 初筛 | 第53页 |
| 1．2．8 复筛 | 第53-54页 |
| 1．2．9 最低抑菌浓度实验MIC | 第54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-58页 |
| 2．1 溶菌酶的浓度影响亲本原生质体的形成 | 第54页 |
| 2．2 亲本原生质体灭活的条件 | 第54-55页 |
| 2．3 原生质体融合 | 第55-57页 |
| 2．3．1 原生质体融合过程 | 第55-56页 |
| 2．3．2 原生质体融合后高产菌株的筛选结果 | 第56-57页 |
| 2．4 MIC实验结果 | 第57-58页 |
| 3 讨论 | 第58-59页 |
| 第五章 山东链霉菌培养条件优化 | 第59-71页 |
| 1 材料与方法 | 第59-62页 |
| 1．1 材料 | 第59-60页 |
| 1．1．1 菌种 | 第59页 |
| 1．1．2 培养基 | 第59页 |
| 1．1．3 实验中选用的碳源和氮源 | 第59-60页 |
| 1．2 方法 | 第60-62页 |
| 1．2．1 不同碳源对山东链霉菌发酵液抗菌活性的影响 | 第60页 |
| 1．2．2 不同氮源对山东链霉菌发酵液抗菌活性的影响 | 第60页 |
| 1．2．3 培养基优化 | 第60-61页 |
| 1．2．4 山东链霉菌最适发酵条件的优化 | 第61-62页 |
| 1．2．4．1 最适发酵周期的测定 | 第61页 |
| 1．2．4．2 最适发酵温度的测定 | 第61页 |
| 1．2．4．3 发酵液最适起始pH值的测定 | 第61页 |
| 1．2．4．4 发酵液最适装量的测定 | 第61-62页 |
| 1．2．4．5 摇床最适转速的测定 | 第62页 |
| 1．2．4．6 最适接种量的测定 | 第62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-70页 |
| 2．1 不同碳源对山东链霉菌发酵液抗菌活性的影响 | 第62-63页 |
| 2．2 不同氮源对山东链霉菌发酵液抗菌活性的影响 | 第63-64页 |
| 2．3 培养基优化结果 | 第64-66页 |
| 2．4 最适发酵条件优化结果 | 第66-70页 |
| 2．4．1 最适发酵周期的测定结果 | 第66页 |
| 2．4．2 最适发酵温度的测定结果 | 第66-67页 |
| 2．4．3 发酵液最适起始pH值的测定结果 | 第67-68页 |
| 2．4．4 发酵液最适装量的测定结果 | 第68-69页 |
| 2．4．5 摇床最适转速的测定结果 | 第69页 |
| 2．4．6 最适接种量的测定结果 | 第69-70页 |
| 3 讨论 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第78-79页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第79页 |
