中文摘要 | 第10-12页 |
ABSTRACT | 第12-14页 |
第一章 文献综述 | 第15-23页 |
1.1 藜麦概述 | 第15页 |
1.2 藜麦的营养特征 | 第15-18页 |
1.3 藜麦生物学功能的研究 | 第18-19页 |
1.3.1 抗氧化、清除自由基作用 | 第18页 |
1.3.2 降血糖、治疗高血脂病 | 第18-19页 |
1.3.3 降低胆固醇、抗炎 | 第19页 |
1.4 黄酮化合物生物活性研究 | 第19-21页 |
1.4.1 抗氧化活性 | 第19页 |
1.4.2 抑菌活性 | 第19-20页 |
1.4.3 抗肿瘤活性 | 第20-21页 |
1.5 本论文立项的目的意义 | 第21-23页 |
第二章 藜麦基本营养成分分析及黄酮化合物的提取 | 第23-31页 |
2.1 引言 | 第23页 |
2.2 材料和设备 | 第23-24页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
2.2.2 主要仪器 | 第24页 |
2.3 实验方法 | 第24-27页 |
2.3.1 基本营养成分测定 | 第24-25页 |
2.3.2 氨基酸成分检测 | 第25-26页 |
2.3.3 藜麦黄酮的提取制备 | 第26页 |
2.3.4 黄酮含量的测定 | 第26页 |
2.3.5 藜麦黄酮的HPLC-DAD检测 | 第26页 |
2.3.6 数据处理 | 第26-27页 |
2.4 结果 | 第27-29页 |
2.4.1 基本营养成分测定 | 第27页 |
2.4.2 氨基酸测定 | 第27-28页 |
2.4.3 黄酮含量的测定 | 第28-29页 |
2.5 本章小结 | 第29-31页 |
第三章 藜麦黄酮提取物体外抗氧化及抑菌活性研究 | 第31-39页 |
3.1 引言 | 第31页 |
3.2 材料与仪器 | 第31-32页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第31-32页 |
3.2.2 主要仪器 | 第32页 |
3.3 实验方法 | 第32-34页 |
3.3.1 藜麦黄酮抗氧化实验 | 第32-33页 |
3.3.2 藜麦黄酮抑菌实验 | 第33-34页 |
3.3.3 数据处理 | 第34页 |
3.4 结果与分析 | 第34-37页 |
3.4.1 藜麦黄酮的清除DPPH自由基能力 | 第34页 |
3.4.2 藜麦黄酮的清除羟自由基能力 | 第34-35页 |
3.4.3 藜麦黄酮的总还原力测定 | 第35-36页 |
3.4.4 藜麦黄酮抑菌活性测定 | 第36-37页 |
3.5 本章小结 | 第37-39页 |
第四章 藜麦黄酮对人结肠癌细胞的影响 | 第39-51页 |
4.1 引言 | 第39页 |
4.2 材料与方法 | 第39-40页 |
4.2.1 细胞 | 第39页 |
4.2.2 材料与试剂 | 第39-40页 |
4.2.3 主要仪器 | 第40页 |
4.3 实验方法 | 第40-42页 |
4.3.1 藜麦黄酮样品制备 | 第40页 |
4.3.2 细胞培养 | 第40页 |
4.3.3 藜麦黄酮抑制癌细胞生长的MTT检测 | 第40页 |
4.3.4 HCT116细胞生长状态的倒置显微镜观察 | 第40-41页 |
4.3.5 细胞核的形态学观察 | 第41页 |
4.3.6 细胞凋亡的流式细胞术分析 | 第41页 |
4.3.7 细胞内活性氧测定 | 第41页 |
4.3.8 细胞抗氧化活性实验 | 第41-42页 |
4.3.9 藜麦黄酮对HCT116细胞体内抗氧化酶的影响 | 第42页 |
4.3.10 统计学分析 | 第42页 |
4.4 结果 | 第42-48页 |
4.4.1 藜麦黄酮对癌细胞生长的MTT检测 | 第42-43页 |
4.4.2 藜麦黄酮对HCT116细胞形态的影响 | 第43-44页 |
4.4.3 藜麦黄酮可促进HCT116细胞晚期凋亡 | 第44-45页 |
4.4.4 藜麦黄酮可诱导HCT116细胞内活性氧的产生 | 第45页 |
4.4.5 藜麦黄酮细胞内抗氧化活性的研究 | 第45-47页 |
4.4.6 藜麦黄酮提高了HCT116细胞内SOD、CAT活力及GSH含量 | 第47-48页 |
4.5 小结 | 第48-51页 |
总结与展望 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-60页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第60-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
个人简况及联系方式 | 第62-65页 |