| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略语表 | 第13-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-23页 |
| 1 生物胺的概述 | 第14页 |
| 2 生物胺的生理功能与毒性 | 第14-15页 |
| 3 食品中的生物胺 | 第15-16页 |
| 4 生物胺的标准与检测 | 第16-19页 |
| 4.1 生物胺的标准 | 第16页 |
| 4.2 生物胺的检测方法 | 第16-19页 |
| 4.2.1 传统检测法 | 第16-17页 |
| 4.2.2 生物传感器法 | 第17-19页 |
| 5 本课题研究的内容、目的及意义 | 第19-22页 |
| 5.1 研究目标 | 第19-20页 |
| 5.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 5.2.1 微流控化学发光酶传感器检测系统的研究及固定化试剂柱的性能评价 | 第20页 |
| 5.2.2 酶柱的研制及其稳定性研究 | 第20页 |
| 5.2.3 微流控芯片化学发光DAO酶传感器的研制及性能评价 | 第20-21页 |
| 5.2.4 实际样品的检测 | 第21页 |
| 5.3 研究意义 | 第21-22页 |
| 6 本课题的创新性 | 第22-23页 |
| 第二章 微流控芯片化学发光酶传感器检测元件的研究及固定化试剂柱的性能评价 | 第23-35页 |
| 引言 | 第23-24页 |
| 1 材料与方法 | 第24-27页 |
| 1.1 主要试剂 | 第24页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 1.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 1.3.1 化学发光试剂的固定化方法 | 第25页 |
| 1.3.2 微流控芯片化学发光检测系统的组装及初始条件 | 第25-26页 |
| 1.3.3 微流控芯片化学发光检测系统操作步骤 | 第26-27页 |
| 1.3.4 固定化试剂柱参与微流控芯片化学发光检测的条件优化 | 第27页 |
| 1.3.5 化学发光试剂柱的制备 | 第27页 |
| 2 结果分析 | 第27-34页 |
| 2.1 化学发光试剂的固定量测定 | 第27-28页 |
| 2.2 固定化试剂柱参与微流控芯片化学发光检测的条件优化 | 第28-32页 |
| 2.2.1 固定化鲁米诺和铁氰化钾质量比的选择 | 第28-29页 |
| 2.2.2 洗脱液及其浓度的选择 | 第29-30页 |
| 2.2.3 NaOH浓度的选择 | 第30-31页 |
| 2.2.4 恒流泵Pump1流速的选择 | 第31-32页 |
| 2.3 化学发光试剂柱的性能评价 | 第32-34页 |
| 2.3.1 稳定性评价 | 第32页 |
| 2.3.2 化学发光试剂柱使用寿命评价 | 第32-34页 |
| 3 结论与讨论 | 第34-35页 |
| 第三章 酶柱的研制及其稳定性研究 | 第35-49页 |
| 引言 | 第35-37页 |
| 1 材料与方法 | 第37-40页 |
| 1.1 主要试剂 | 第37页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第37页 |
| 1.3 实验方法 | 第37-40页 |
| 1.3.1 胺氧化酶的固定化 | 第37-38页 |
| 1.3.2 固定化酶偶联率的测定 | 第38页 |
| 1.3.3 微流控芯片化学发光传感器检测生物胺的可行性验证 | 第38-39页 |
| 1.3.4 不同酶活关于相对化学发光值的曲线的建立 | 第39页 |
| 1.3.5 游离酶和固定化酶的pH稳定性和热稳定性 | 第39页 |
| 1.3.6 游离酶和固定化酶的动力学曲线 | 第39-40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-48页 |
| 2.1 酶的固定化条件 | 第40-41页 |
| 2.2 固定化酶的形貌结构分析 | 第41-42页 |
| 2.3 微流控芯片化学发光传感器检测生物胺的研究 | 第42-44页 |
| 2.3.1 干扰因素试验 | 第43-44页 |
| 2.4 不同酶活关于相对化学发光值的曲线的建立 | 第44-45页 |
| 2.5 固定化酶的pH稳定性和热稳定性 | 第45-47页 |
| 2.6 游离酶和固定化酶的动力学曲线 | 第47-48页 |
| 3 结论与讨论 | 第48-49页 |
| 第四章 微流控芯片化学发光DAO酶传感器的研制及性能评价 | 第49-67页 |
| 引言 | 第49-50页 |
| 1 材料与方法 | 第50-56页 |
| 1.1 实验材料 | 第50页 |
| 1.2 主要试剂及其制备 | 第50-51页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第51页 |
| 1.4 实验方法 | 第51-56页 |
| 1.4.1 酶柱的制备 | 第51-52页 |
| 1.4.2 微流控芯片化学发光DAO酶传感器的组装 | 第52页 |
| 1.4.3 传感器的使用流程 | 第52-53页 |
| 1.4.4 酶柱装载量的确定 | 第53页 |
| 1.4.5 Pump2流速的确定 | 第53-54页 |
| 1.4.6 实际样品的检测 | 第54页 |
| 1.4.7 HPLC法验证实验 | 第54-56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-65页 |
| 2.1 微流控芯片化学发光传感器条件优化 | 第56-57页 |
| 2.1.1 酶柱装载量的确定 | 第56-57页 |
| 2.1.2 Pump2流速的确定 | 第57页 |
| 2.2 标准曲线的建立 | 第57-59页 |
| 2.3 传感器的性能评价 | 第59-63页 |
| 2.3.1 酶与三种底物的特异性实验 | 第59-61页 |
| 2.3.2 精密度实验 | 第61页 |
| 2.3.3 回收率实验 | 第61-62页 |
| 2.3.4 固定化酶的保存时间 | 第62-63页 |
| 2.4 高效液相色谱验证实验 | 第63-65页 |
| 2.4.1 生物胺混标的HPLC法分析 | 第63页 |
| 2.4.2 高效液相色谱法测3种生物胺的线性范围、标准曲线、检出限和加标回收率 | 第63-64页 |
| 2.4.3 传感器法与高效液相色谱法在实际样品检测中的比较 | 第64-65页 |
| 3 结论与讨论 | 第65-66页 |
| 4 研究展望 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 附录 | 第75页 |
