动物食品中VB12柱前衍生-HPLC分析法的研究
| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 实验技术路线图 | 第11-12页 |
| 1 试验方法 | 第12-16页 |
| ·试剂 | 第12-13页 |
| ·仪器设备 | 第13-14页 |
| ·分析步骤 | 第14-16页 |
| ·样品采集与处理 | 第14页 |
| ·提取 | 第14页 |
| ·富集净化 | 第14-15页 |
| ·高效液相色谱测定 | 第15页 |
| ·标准曲线 | 第15-16页 |
| ·计算 | 第16页 |
| ·CN-VB12标准色谱图 | 第16页 |
| 2 结果与讨论 | 第16-64页 |
| ·衍生条件的优化选择 | 第16-22页 |
| ·衍生试剂的选择 | 第17页 |
| ·衍生温度的优化选择 | 第17-18页 |
| ·衍生时间的优化 | 第18-20页 |
| ·不同结构VB12热稳定性 | 第18-19页 |
| ·衍生时间的选择 | 第19-20页 |
| ·衍生剂用量的优化 | 第20-22页 |
| ·影响因素 | 第22-25页 |
| ·VC对不同结构VB12的降解作用 | 第22页 |
| ·Fe3+与VC互相作用研究 | 第22-25页 |
| ·提取条件优化 | 第25-27页 |
| ·提取方式的选择 | 第25页 |
| ·提取溶剂pH的选择 | 第25-26页 |
| ·提取液溶剂组成的优化 | 第26-27页 |
| ·结合态VB12的分离 | 第27-33页 |
| ·酶解条件优化 | 第27-32页 |
| ·酶的选择 | 第27-29页 |
| ·酶解用量 | 第29-31页 |
| ·酶解时间 | 第31-32页 |
| ·酸水解 | 第32-33页 |
| ·衍生剂用量的校正 | 第33-35页 |
| ·肝脏类样品 | 第33-34页 |
| ·鱼类肉类样品 | 第34-35页 |
| ·小结 | 第35页 |
| ·富集净化 | 第35-44页 |
| ·固相萃取 | 第35-41页 |
| ·固相萃取柱的选择 | 第35-36页 |
| ·淋洗条件的优化 | 第36-40页 |
| ·淋洗溶液浓度 | 第36-37页 |
| ·淋洗体积优化 | 第37-40页 |
| ·标准物质最大淋洗体积的确定 | 第37-38页 |
| ·样品淋洗体积的确定 | 第38-40页 |
| ·洗脱条件优化选择 | 第40-41页 |
| ·与免疫亲和法的比较 | 第41-44页 |
| ·免疫亲和法洗脱条件优化 | 第41页 |
| ·免疫亲和柱同收率测定 | 第41-42页 |
| ·测定数据对比 | 第42-43页 |
| ·固相萃取法与免疫亲合法色谱图对比 | 第43-44页 |
| ·仪器条件 | 第44-53页 |
| ·检测波长的选择 | 第44-46页 |
| ·色谱柱选择 | 第46-47页 |
| ·流动相的优化 | 第47-53页 |
| ·等度洗脱程序和梯度洗脱程序的选择与优化 | 第47-53页 |
| ·免疫亲合法等度洗脱程序与梯度洗脱程序比较 | 第47-48页 |
| ·固相萃取法等度洗脱与梯度洗脱洗脱程序比较 | 第48-50页 |
| ·梯度法基线漂移的改进 | 第50-53页 |
| ·方法学研究 | 第53-56页 |
| ·准确度 | 第53-54页 |
| ·精密度 | 第54页 |
| ·稳定性 | 第54-55页 |
| ·标准曲线 | 第55-56页 |
| ·部分测定结果 | 第56-57页 |
| ·化学法微生物法与文献中的结果比较 | 第57-60页 |
| ·摄食方式对于VB12的影响 | 第60-64页 |
| ·烹饪方法对食物中VB12的影响 | 第60-63页 |
| ·烹饪加热介质对于食物的影响 | 第60-63页 |
| ·煎炒温度模拟 | 第61页 |
| ·油炸 | 第61-62页 |
| ·水煮 | 第62-63页 |
| ·合理烹饪建议 | 第63-64页 |
| ·油介质中的的烹饪建议 | 第63-64页 |
| ·水介质中的烹饪的建议 | 第64页 |
| 总结和展望 | 第64-65页 |
| 1 总结 | 第64页 |
| 2 创新点和展望 | 第64页 |
| 3 问题与建议 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 附录 | 第67-80页 |
| 文献综述 | 第80-93页 |
| 参考文献 | 第89-93页 |
| 硕士研究生期间发表文章 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
