| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 1 前言 | 第8-26页 |
| ·自组装单分子膜(Self-assembled monolayers,SAMs) | 第8-9页 |
| ·SAMs概述 | 第8页 |
| ·金-硫体系SAMs | 第8-9页 |
| ·ATRP技术 | 第9-10页 |
| ·ATRP概述 | 第9-10页 |
| ·研究抗非特异性蛋白吸附的重要性 | 第10-16页 |
| ·抗非特异性蛋白吸附机理的研究 | 第11-12页 |
| ·抗非特异性蛋白吸附的材料种类 | 第12-15页 |
| ·抗非特异性蛋白吸附材料的制备方法 | 第15-16页 |
| ·蛋白吸附的测试手段 | 第16-19页 |
| ·椭偏仪 | 第16-17页 |
| ·石英晶体微天平法(QCM) | 第17页 |
| ·SPR技术 | 第17-19页 |
| ·生物传感性能的研究 | 第19-24页 |
| ·生物传感器概述 | 第19-20页 |
| ·生物识别分子的固定 | 第20-21页 |
| ·生物分子的固定材料 | 第21-22页 |
| ·生物分子的固定方法 | 第22-23页 |
| ·生物传感器的发展趋势 | 第23-24页 |
| ·研究内容、目的及意义 | 第24-26页 |
| ·研究内容 | 第24页 |
| ·研究目的及意义 | 第24-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-35页 |
| ·实验主要试剂 | 第26-27页 |
| ·实验主要仪器 | 第27页 |
| ·主要实验过程 | 第27-33页 |
| ·硅基质表面探究单体OEGMA的聚合条件 | 第27-29页 |
| ·金基质表面制备双功能高分子刷 | 第29-33页 |
| ·双功能高分子刷生物传感性能的研究 | 第33页 |
| ·表征方法 | 第33-35页 |
| ·核磁共振光谱(NMR) | 第33页 |
| ·静态水接触角 | 第33页 |
| ·傅里叶变换红外光谱(FT-IR) | 第33页 |
| ·X射线光电子能谱(XPS) | 第33-34页 |
| ·SPR | 第34-35页 |
| 3 结果与讨论 | 第35-48页 |
| ·单体OEGMA聚合条件探究 | 第35-38页 |
| ·引发剂BrTMOS的表征 | 第35-36页 |
| ·硅基质表面聚合物POEGMA的红外表征 | 第36-37页 |
| ·各组分基质接触角表征 | 第37-38页 |
| ·金基质表面制备双功能高分子刷 | 第38-44页 |
| ·XPS表征接枝引发剂后的金基质 | 第38-39页 |
| ·SPR表征金基质表面POEGMA膜厚度变化情况 | 第39-40页 |
| ·FT-IR表征DSC/DMAP活化POEGMA末端羟基 | 第40-41页 |
| ·接枝Biotin-NH_2 | 第41-43页 |
| ·FT-IR表征Biotin-NH_2的接枝 | 第43-44页 |
| ·功能高分子刷生物传感性能的检测 | 第44-48页 |
| ·模型蛋白的选择 | 第44页 |
| ·SPR表征Bare Au、POEGMA基质对非特异性蛋白Lyz的吸附情况 | 第44-46页 |
| ·SPR表征POEGMA Biotin-NH_2基质对Streptavidin的特异性识别能力 | 第46-48页 |
| 4 结论 | 第48-49页 |
| 5 展望 | 第49-50页 |
| 6 参考文献 | 第50-58页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第58-59页 |
| 8 致谢 | 第59页 |
