| 第一章 文献综述与立题思路 | 第1-28页 |
| ·文献综述 | 第13-25页 |
| ·荞麦的生物学特性及分布 | 第13-14页 |
| ·荞麦的营养价值 | 第14-17页 |
| ·荞麦的生理功能 | 第17-18页 |
| ·自由基与抗氧化 | 第18-20页 |
| ·荞麦生物活性成分及其研究进展 | 第20-24页 |
| ·谷物的萌发 | 第24-25页 |
| ·资料分析与立题思路 | 第25-28页 |
| ·资料分析 | 第25页 |
| ·本课题研究意义 | 第25-26页 |
| ·研究内容和技术路线 | 第26-28页 |
| 第二章 发芽处理对荞麦小分子营养成分的影响 | 第28-36页 |
| ·材料与方法 | 第28-30页 |
| ·试验材料 | 第28页 |
| ·仪器设备 | 第28页 |
| ·药品、试剂 | 第28-29页 |
| ·荞麦萌发试验 | 第29页 |
| ·荞麦萌发后的形态变化 | 第29页 |
| ·可溶糖测定-蒽酮比色法 | 第29页 |
| ·荞麦脂肪酸含量的测定 | 第29-30页 |
| ·氨基酸含量的测定 | 第30页 |
| ·矿物元素的测定 | 第30页 |
| ·结果与分析 | 第30-34页 |
| ·荞麦萌发后可溶糖含量变化 | 第30-31页 |
| ·荞麦萌发后脂肪酸含量变化分析 | 第31-33页 |
| ·荞麦萌发后矿物质含量变化分析 | 第33-34页 |
| ·小结 | 第34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 第三章 HPLC法测定荞麦中类黄酮物质方法的建立 | 第36-41页 |
| ·材料与方法 | 第36-37页 |
| ·荞麦材料 | 第36页 |
| ·仪器 | 第36页 |
| ·试剂和药品 | 第36-37页 |
| ·芦丁、槲皮素混合标准样品的制备 | 第37页 |
| ·样品液的制备 | 第37页 |
| ·色谱条件 | 第37页 |
| ·结果与分析 | 第37-40页 |
| ·最佳波长的选择 | 第37-38页 |
| ·流动相的选择 | 第38页 |
| ·标准样品的浓度-峰面积线性响应范围 | 第38-39页 |
| ·精密度与重复性检验 | 第39-40页 |
| ·回收率测定 | 第40页 |
| ·小结 | 第40-41页 |
| 第四章 萌发处理对荞麦类黄酮物质和苯丙氨酸解氨酶活性的影响 | 第41-50页 |
| ·材料与方法 | 第43-45页 |
| ·材料 | 第43页 |
| ·仪器 | 第43页 |
| ·试剂和药品 | 第43页 |
| ·类黄酮提取液的制备 | 第43页 |
| ·总黄酮类物质的测定 | 第43-44页 |
| ·HPLC法测定荞麦中芦丁和槲皮素 | 第44页 |
| ·苯丙氨酸解氨酶(PAL)的活性测定 | 第44-45页 |
| ·统计方法 | 第45页 |
| ·结果与分析 | 第45-49页 |
| ·萌发荞麦中总黄酮含量变化 | 第45-46页 |
| ·萌发荞麦芦丁、槲皮素含量变化 | 第46-47页 |
| ·荞麦萌发过程中苯丙氨酸解氨酶的活性变化及与黄酮含量变化的关系 | 第47-49页 |
| ·小结 | 第49-50页 |
| 第五章 萌发荞麦蛋白质组分及蛋白酶抑制剂含量变化的研究 | 第50-64页 |
| ·材料与方法 | 第51-54页 |
| ·材料 | 第51页 |
| ·仪器和试剂 | 第51页 |
| ·蛋白质组分分离方法 | 第51-52页 |
| ·各指标测定方法 | 第52页 |
| ·萌发荞麦蛋白质的体外消化率测定 | 第52页 |
| ·萌发荞麦胰蛋白酶抑制剂的提取 | 第52-53页 |
| ·粗提液的蛋白质含量测定 | 第53页 |
| ·粗提液活性测定 | 第53-54页 |
| ·结果与分析 | 第54-61页 |
| ·萌发荞麦总蛋白含量变化 | 第54页 |
| ·荞麦萌发后各蛋白组分含量变化 | 第54-57页 |
| ·萌发处理对荞麦蛋白质消化率的影响 | 第57-58页 |
| ·荞麦胰蛋白酶抑制剂提取方法的比较 | 第58-59页 |
| ·胰蛋白酶的活性检测和酶用量的确定 | 第59-60页 |
| ·酶抑制剂提取液的热处理实验 | 第60页 |
| ·萌发荞麦胰蛋白酶抑制剂的活性变化 | 第60-61页 |
| ·养麦萌发后胰蛋白酶抑制剂与蛋白消化率之间的相关分析 | 第61页 |
| ·结论 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| 第六章 萌发荞麦氨基酸含量变化及其营养评价 | 第64-72页 |
| ·材料与方法 | 第64-65页 |
| ·材料 | 第64页 |
| ·仪器和试剂 | 第64-65页 |
| ·各指标测定方法 | 第65页 |
| ·氨基酸含量的测定 | 第65页 |
| ·氨基酸营养评价 | 第65页 |
| ·结果与分析 | 第65-70页 |
| ·荞麦萌发后氨基酸总量的变化 | 第65-66页 |
| ·荞麦萌发后必需氨基酸含量变化 | 第66-67页 |
| ·萌发荞麦非必需氨基酸含量变化 | 第67-68页 |
| ·荞麦萌发后必需氨基酸总量占总蛋白含量变化 | 第68-69页 |
| ·萌发荞麦氨基酸的化学法营养评价 | 第69-70页 |
| ·小结 | 第70页 |
| ·讨论 | 第70-72页 |
| 第七章 荞麦蛋白和类黄酮提取物清除自由基的ESR研究 | 第72-84页 |
| ·材料与方法 | 第72-74页 |
| ·实验材料 | 第72-73页 |
| ·主要仪器 | 第73页 |
| ·主要试剂 | 第73页 |
| ·O_2~-.检测方法 | 第73-74页 |
| ·OH检测方法 | 第74页 |
| ·粗蛋白含量的测定 | 第74页 |
| ·总黄酮类物质的测定 | 第74页 |
| ·矿物元素含量测定 | 第74页 |
| ·结果与分析 | 第74-82页 |
| ·荞麦蛋白提取物对O_2~-.的清除作用 | 第74-76页 |
| ·荞麦蛋白质对.OH的清除作用 | 第76-77页 |
| ·荞麦萌发后蛋白提取液对O_2~-.和.OH的清除作用 | 第77-78页 |
| ·荞麦球蛋白清除自由基的作用 | 第78-79页 |
| ·荞麦蛋白质中主要矿物元素含量 | 第79页 |
| ·荞麦类黄酮提取液清除O_2~-.的作用 | 第79-80页 |
| ·荞麦类黄酮提取液清除.OH的作用 | 第80-81页 |
| ·荞麦萌发后类黄酮提取液清除O_2~-.和.OH的作用 | 第81-82页 |
| ·结论 | 第82页 |
| ·讨论 | 第82-84页 |
| 第八章 荞麦类黄酮和蛋白质提取物对过氧化特丁烷引起的红细胞脂质过氧化损伤的保护作用 | 第84-94页 |
| ·材料与方法 | 第84-86页 |
| ·材料 | 第84页 |
| ·主要仪器 | 第84-85页 |
| ·试剂 | 第85页 |
| ·红细胞悬液制备 | 第85页 |
| ·荞麦类黄酮提取液对TBHP引起的红细胞溶血和MDA生成的测定 | 第85-86页 |
| ·荞麦蛋白质提取液对TBHP引起的红细胞溶血和MDA生成的测定 | 第86页 |
| ·高铁血红蛋白的测定 | 第86页 |
| ·统计分析 | 第86页 |
| ·结果与分析 | 第86-92页 |
| ·荞麦类黄酮提取液对TBHP引发的红细胞溶血的抑制作用 | 第86-87页 |
| ·荞麦类黄酮提取液对MDA形成的影响 | 第87-89页 |
| ·荞麦类黄酮提取液对高铁血红蛋白生成的影响 | 第89页 |
| ·荞麦蛋白质提取液对TBHP引起的红细胞溶血的抑制作用 | 第89-90页 |
| ·荞麦蛋白质提取液对红细胞MDA形成的影响 | 第90-91页 |
| ·荞麦蛋白质提取液对高铁血红蛋白生成的影响 | 第91-92页 |
| ·结论 | 第92页 |
| ·讨论 | 第92-94页 |
| 全文讨论与结论 | 第94-98页 |
| 1 全文总体讨论 | 第94-96页 |
| ·萌发荞麦类黄酮 | 第94页 |
| ·荞麦蛋白酶抑制剂和蛋白消化率 | 第94-95页 |
| ·荞麦类黄酮和蛋白提取物的清除自由基活性 | 第95-96页 |
| ·荞麦类黄酮和蛋白质提取物对红细胞膜脂质过氧化的保护作用 | 第96页 |
| 2 总体结论 | 第96-97页 |
| 3 本研究创新之处 | 第97页 |
| 4 展望 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
| 作者简介 | 第108页 |
