| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第11-22页 |
| 1.1 环氧化物水解酶的简介 | 第11-14页 |
| 1.1.1 环氧化物水解酶概述 | 第11-12页 |
| 1.1.2 环氧化物水解酶的研究现状 | 第12-14页 |
| 1.2 肉桂醇类环氧化物的简介 | 第14-20页 |
| 1.2.1 肉桂醇类环氧化物概述 | 第14页 |
| 1.2.2 肉桂醇类环氧化物的制备方法 | 第14-16页 |
| 1.2.3 肉桂醇类环氧化物的应用 | 第16-20页 |
| 1.3 本课题的研究背景及内容 | 第20-22页 |
| 1.3.1 本课题的研究背景 | 第20页 |
| 1.3.2 本课题的研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 环氧化物水解酶产生菌的筛选及鉴定 | 第22-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-27页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第23页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 培养基 | 第24页 |
| 2.1.4 配制试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.5 菌种来源 | 第25页 |
| 2.1.6 PG的化学法合成 | 第25页 |
| 2.1.7 菌种的筛选及分离 | 第25-27页 |
| 2.1.8 菌种鉴定 | 第27页 |
| 2.2 结果和讨论 | 第27-30页 |
| 2.2.1 筛选结果 | 第27-28页 |
| 2.2.2 菌种的纯化及鉴定 | 第28-30页 |
| 2.3 本章小结 | 第30-31页 |
| 第三章 A.fumigatus ZJUTZQ160发酵条件优化 | 第31-44页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第31页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 3.1.3 菌种 | 第31页 |
| 3.1.4 培养基 | 第31-32页 |
| 3.1.5 菌体制备及整细胞转化 | 第32页 |
| 3.1.6 生物量测定 | 第32页 |
| 3.1.7 转化率c及e.e.s值的测定 | 第32页 |
| 3.1.8 响应面试验优化设计 | 第32-33页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第33-43页 |
| 3.2.1 不同种类碳源对细胞活性和立体选择性e.e.s的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.2 不同种类氮源对细胞活性和立体选择性e.e.s值的影响 | 第34-36页 |
| 3.2.3 金属离子对细胞活性和立体选择性e.e.s值的影响 | 第36-38页 |
| 3.2.4 初始pH对细胞活性和立体选择性e.e.s值的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.5 发酵时间对细胞活性和立体选择性e.e.s值的影响 | 第39页 |
| 3.2.6 响应面试验结果 | 第39-43页 |
| 3.3 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 A.fumigatus ZJUTZQ160整细胞对环氧化物水解拆分条件研究 | 第44-58页 |
| 4.1 材料与方法 | 第44-48页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第44页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 4.1.3 菌种 | 第45页 |
| 4.1.4 培养基 | 第45页 |
| 4.1.5 菌体制备 | 第45页 |
| 4.1.6 整细胞转化试验及对映选择性的检测 | 第45-46页 |
| 4.1.7 环氧肉桂醇类似物的合成 | 第46-48页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第48-57页 |
| 4.2.1 不同的缓冲液及pH对底物拆分的影响 | 第48-50页 |
| 4.2.2 不同的助溶剂对底物拆分的影响 | 第50-51页 |
| 4.2.3 吐温80对底物拆分的影响 | 第51-52页 |
| 4.2.4 底物初始浓度对底物拆分的影响 | 第52-53页 |
| 4.2.5 转化时间对底物拆分的影响 | 第53-54页 |
| 4.2.6 底物特异性研究 | 第54-57页 |
| 4.3 本章小结 | 第57-58页 |
| 第五章 总结与展望 | 第58-60页 |
| 5.1 总结 | 第58-59页 |
| 5.2 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 附图 | 第68-75页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第75页 |
