| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1. 文献综述 | 第12-24页 |
| 1.1 木葡糖酸醋杆菌 | 第12-13页 |
| 1.1.1 木葡糖酸醋杆菌与细菌纤维素 | 第12-13页 |
| 1.1.1.1 细菌纤维素的结构 | 第12-13页 |
| 1.1.1.2 细菌纤维素的功能性质 | 第13页 |
| 1.1.2 木葡糖酸醋杆菌的其他代谢产物 | 第13页 |
| 1.2 椰纤果 | 第13-16页 |
| 1.2.1 椰子水 | 第14页 |
| 1.2.2 椰纤果的发酵方式 | 第14-16页 |
| 1.2.2.1 静态发酵 | 第14-15页 |
| 1.2.2.2 动态发酵 | 第15-16页 |
| 1.3 红曲霉 | 第16-19页 |
| 1.3.1 红曲霉 | 第16页 |
| 1.3.2 红曲霉的主要代谢产物 | 第16-18页 |
| 1.3.2.1 红曲色素 | 第16-17页 |
| 1.3.2.2 Monacolin K类物质 | 第17-18页 |
| 1.3.2.3 桔霉素 | 第18页 |
| 1.3.2.4 红曲霉的其他代谢产物 | 第18页 |
| 1.3.3 红曲霉的抑菌性 | 第18-19页 |
| 1.4 混菌发酵研究现状 | 第19-21页 |
| 1.4.1 纤维素产生菌的混合发酵 | 第19-20页 |
| 1.4.2 红曲霉的混合发酵 | 第20-21页 |
| 1.4.3 木葡糖酸醋杆菌与红曲霉共发酵的可行性 | 第21页 |
| 1.5 红曲椰纤果 | 第21-23页 |
| 1.5.1 国内外红曲椰果的研究概况 | 第21-23页 |
| 1.5.2 红曲椰纤果的开发前景 | 第23页 |
| 1.6 本课题的研究内容、目的与意义 | 第23-24页 |
| 1.6.1 研究目的和意义 | 第23-24页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-32页 |
| 2.1 材料 | 第24-27页 |
| 2.1.1 菌株 | 第24页 |
| 2.1.2 椰子水的采集和制备 | 第24-25页 |
| 2.1.3 培养基 | 第25-26页 |
| 2.1.3.1 木葡糖酸醋杆菌培养基 | 第25页 |
| 2.1.3.2 红曲霉培养基 | 第25-26页 |
| 2.1.4 试剂 | 第26页 |
| 2.1.5 主要仪器与设备 | 第26-27页 |
| 2.2 方法 | 第27-31页 |
| 2.2.1 种子液的制备 | 第27页 |
| 2.2.1.1 木葡糖酸醋杆菌液体种子的制备 | 第27页 |
| 2.2.1.2 红曲霉液体种子的制备 | 第27页 |
| 2.2.2 G.xylinus Y15种子培养基的优化 | 第27-28页 |
| 2.2.2.1 椰子水比例对G.xylinus Y15生长的影响 | 第27页 |
| 2.2.2.2 培养方式对G.xylinus Y15生长的影响 | 第27页 |
| 2.2.2.3 蔗糖含量对G.xylinus Y15生长的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.2.4 (NH_4)_2SO_4浓度对G.xylinus Y15生长的影响 | 第28页 |
| 2.2.3 G.xylinus Y15的生长规律 | 第28页 |
| 2.2.4 G.xylinus Y15与红曲霉拮抗作用的研究 | 第28-29页 |
| 2.2.5 红曲霉在椰子水培养基中的生长和代谢 | 第29-30页 |
| 2.2.5.1 红曲霉菌落的观察 | 第29页 |
| 2.2.5.2 红曲霉菌丝体的显微观察 | 第29-30页 |
| 2.2.5.3 红曲霉产色素的能力的研究 | 第30页 |
| 2.2.5.4 红曲霉产莫纳可林K的能力的研究 | 第30页 |
| 2.2.6 共发酵方式的确定 | 第30-31页 |
| 2.2.6.1 静置共发酵 | 第30页 |
| 2.2.6.2 振荡共发酵 | 第30-31页 |
| 2.2.7 不同红曲霉菌株对共发酵产物形态的影响 | 第31页 |
| 2.2.8 不同木葡糖酸醋杆菌对共发酵产物形态的影响 | 第31页 |
| 2.2.9 扫描电镜(SEM)观察 | 第31页 |
| 2.3 测定方法 | 第31-32页 |
| 2.3.1 共发酵产物产量的测定 | 第31-32页 |
| 2.3.2 色价的测定 | 第32页 |
| 2.3.3 莫纳可林K的测定 | 第32页 |
| 2.3.3.1 色谱条件 | 第32页 |
| 2.3.3.2 标准品的制备和样品前处理 | 第32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-63页 |
| 3.1 G. xylinus Y15种子培养基的优化 | 第32-36页 |
| 3.1.1 椰子水比例对G. xylinus Y15生长量的影响 | 第33-34页 |
| 3.1.2 培养方式对G. xylinus Y15生长量的影响 | 第34-35页 |
| 3.1.3 蔗糖含量对G. xylinus Y15生长量的影响 | 第35页 |
| 3.1.4 (NH_4)_2SO_4浓度对G. xylinus Y15生长量的影响 | 第35-36页 |
| 3.2 G. xylinus Y15的生长规律 | 第36-37页 |
| 3.3 红曲霉菌在椰子水培养基中的生长和代谢 | 第37-46页 |
| 3.3.1 红曲霉菌落和菌丝特征 | 第37-40页 |
| 3.3.1.1 红曲霉菌落特征 | 第37-38页 |
| 3.3.1.2 红曲霉菌丝体特征 | 第38-40页 |
| 3.3.2 红曲霉产色素能力 | 第40-43页 |
| 3.3.3 红曲霉产莫纳可林K能力 | 第43-46页 |
| 3.4 木葡糖酸醋杆菌和红曲霉之间的拮抗作用研究 | 第46-48页 |
| 3.5 木葡糖酸醋杆菌与红曲霉共发酵方式的确定 | 第48-51页 |
| 3.5.1 静置共发酵 | 第48-49页 |
| 3.5.2 振荡共发酵 | 第49-51页 |
| 3.5.2.1 先接种红曲霉菌再接种木葡糖酸醋杆菌 | 第50页 |
| 3.5.2.2 先接种G. xylinus Y15再接种As3.549 | 第50-51页 |
| 3.6 不同菌株对产物形态的影响 | 第51-54页 |
| 3.6.1 不同纤维素产生菌菌株的影响 | 第51-52页 |
| 3.6.2 不同红曲霉的影响 | 第52-54页 |
| 3.6.2.1 不同红曲霉对产物形态的影响 | 第52-54页 |
| 3.6.2.2 不同红曲霉对共发酵产物色价的影响 | 第54页 |
| 3.7 共发酵产物结构观察和描述 | 第54-63页 |
| 3.7.1 表面特征的显微观察 | 第54-56页 |
| 3.7.2 扫描电镜观察 | 第56-59页 |
| 3.7.3 共发酵产物内部结构的电镜逐步描述 | 第59-63页 |
| 4 讨论 | 第63-65页 |
| 4.1 纤维素酶的添加 | 第63页 |
| 4.2 混合发酵条件 | 第63-64页 |
| 4.3 不同红曲霉与一株木葡糖酸醋杆菌共发酵 | 第64页 |
| 4.4 不同木葡糖酸醋杆菌与一株红曲霉共发酵 | 第64页 |
| 4.5 红曲霉与纤维素产生菌之间的相互作用 | 第64-65页 |
| 4.6 产物色价与通气量 | 第65页 |
| 4.7 共发酵产物中菌丝体的作用 | 第65页 |
| 5 结论 | 第65-66页 |
| 6 本课题创新点及展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 已发表论文情况 | 第79页 |
