摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-13页 |
第一章 绪论 | 第13-24页 |
·生物化学改性方法概况 | 第14-15页 |
·钛表面生物分子固定前的处理技术 | 第15-16页 |
·化学处理 | 第15页 |
·低温等离子体处理 | 第15-16页 |
·离子注入 | 第16页 |
·自组装单层 | 第16页 |
·材料表面硅烷化 | 第16-22页 |
·硅烷偶联剂的发展历史 | 第17-18页 |
·硅烷偶联剂的结构及其作用机理 | 第18页 |
·化学键合理论 | 第18-20页 |
·硅烷对有机物的作用机理 | 第19页 |
·硅烷对无机非金属材料的作用机理 | 第19-20页 |
·硅烷对金属材料的作用机理 | 第20页 |
·物理作用理论 | 第20-21页 |
·表面浸润理论(或表面能理论) | 第21页 |
·可逆平衡理论 | 第21页 |
·酸碱相互作用理论 | 第21-22页 |
·钛基金属材料表面进行有机分子固定预处理的研究现状 | 第22页 |
·本课题的目的和研究意义 | 第22-24页 |
第二章 浸渍法制备纯钛表面硅烷膜及其测试与表征 | 第24-33页 |
·引言 | 第24页 |
·实验方法 | 第24-26页 |
·试验仪器及药品 | 第24-25页 |
·硅烷膜的制备 | 第25页 |
·样品表征 | 第25-26页 |
·结果与讨论 | 第26-32页 |
·硅烷膜的表面微观形貌 | 第26-28页 |
·材料表面改性前后的电子探针分析 | 第28-29页 |
·材料表面改性前后的X射线衍射分析 | 第29-30页 |
·硅烷膜的FTIR分析 | 第30-31页 |
·硅烷膜表面亲水性分析 | 第31-32页 |
·结论 | 第32-33页 |
第三章 冷凝回流法制备纯钛表面硅烷膜及其测试与表征 | 第33-40页 |
·引言 | 第33页 |
·实验方法 | 第33-36页 |
·试验仪器及药品 | 第33-34页 |
·硅烷化处理 | 第34-35页 |
·表面表征 | 第35-36页 |
·结果与讨论 | 第36-39页 |
·FTIR结果 | 第36-37页 |
·XPS结果 | 第37-38页 |
·接触角测试结果 | 第38-39页 |
·扫描电镜SEM结果 | 第39页 |
·结论 | 第39-40页 |
第四章 HMSCs的体外分离、扩增培养 | 第40-46页 |
·材料 | 第40-42页 |
·主要试剂 | 第40-41页 |
·主要实验仪器和器材 | 第41页 |
·主要试剂配制 | 第41-42页 |
·方法 | 第42-44页 |
·HMSCs的分离与原代培养 | 第42-43页 |
·HMSCs的体外扩增 | 第43页 |
·HMSCs的冻存 | 第43-44页 |
·讨论 | 第44-45页 |
·结论 | 第45-46页 |
第五章 HMSCs与钛基材料体外相互作用的研究 | 第46-64页 |
·材料 | 第46-48页 |
·试验材料 | 第46页 |
·主要试剂 | 第46-47页 |
·主要仪器 | 第47页 |
·主要试剂配制 | 第47-48页 |
·方法 | 第48-51页 |
·HMSCs与不同材料复合培养 | 第48页 |
·HMSCs在不同材料表面的形态检测 | 第48页 |
·HMSCs在不同材料上的粘附和增殖 | 第48-49页 |
·定向诱导hMSCs分化为成骨细胞及鉴定 | 第49页 |
·成骨诱导 | 第49页 |
·碱性磷酸酶(ALP)的染色 | 第49页 |
·钙结节染色 | 第49页 |
·碱性磷酸酶活性测定 | 第49页 |
·细胞骨架蛋白染色 | 第49-50页 |
·COLⅠ荧光免疫组化 | 第50-51页 |
·结果 | 第51-55页 |
·HMSCs在不同材料表面的形态及粘附 | 第51页 |
·HMSCs在不同材料表面的增殖 | 第51-52页 |
·碱性磷酸酶染色 | 第52-53页 |
·钙结节染色 | 第53页 |
·碱性磷酸酶活性 | 第53-55页 |
·细胞总蛋白含量测定 | 第53-54页 |
·碱性磷酸酶活性检测(ALP活性) | 第54-55页 |
·细胞骨架蛋白染色 | 第55-61页 |
·COLⅠ荧光免疫组化 | 第61-63页 |
·小结 | 第63-64页 |
结论 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-73页 |
附图 | 第73-83页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第83-84页 |
致谢 | 第84-85页 |
答辩委员会对论文的评定意见 | 第85页 |