摘要 | 第5-6页 |
abstract | 第6-7页 |
第一章 引言 | 第13-19页 |
1.1 前言 | 第13页 |
1.2 拟禾本科根结线虫的生物学特性 | 第13-14页 |
1.2.1 拟禾本科根结线虫的寄主范围 | 第13页 |
1.2.2 拟禾本科根结线虫的生活史 | 第13-14页 |
1.2.3 拟禾本科根结线虫的危害特性 | 第14页 |
1.3 根结线虫的防治 | 第14-18页 |
1.3.1 农业防治 | 第14-15页 |
1.3.2 物理防治 | 第15页 |
1.3.3 化学防治 | 第15页 |
1.3.4 生物防治 | 第15-18页 |
1.3.4.1 生防真菌的主要种类 | 第16-18页 |
1.3.4.2 黑曲霉防治根结线虫的研究进展 | 第18页 |
1.4 研究目的和意义 | 第18-19页 |
第二章 百岁兰曲霉生防真菌的分离鉴定及其对拟禾本科根结线虫的毒力测定 | 第19-28页 |
2.1 材料与方法 | 第19-23页 |
2.1.1 供试材料 | 第19页 |
2.1.2 拟禾本科二龄幼虫(J2)及卵悬浮液的制备 | 第19-20页 |
2.1.3 真菌AW2017孢子悬浮液的制备 | 第20页 |
2.1.4 培养基的配制 | 第20页 |
2.1.5 主要仪器和耗材 | 第20页 |
2.1.6 真菌AW2017的形态学鉴定 | 第20页 |
2.1.7 真菌AW2017的分子生物学鉴定 | 第20-23页 |
2.1.7.1 真菌AW2017的DNA提取 | 第20-21页 |
2.1.7.2 目的菌株ITS区特异性引物检测 | 第21-22页 |
2.1.7.3 ITS片段产物的回收、连接和转化 | 第22页 |
2.1.7.4 目的菌株DNA测序及系统发育分析 | 第22-23页 |
2.1.8 真菌AW2017孢子悬浮液对二龄幼虫的毒杀作用 | 第23页 |
2.1.9 真菌AW2017孢子悬浮液对卵囊孵化的影响 | 第23页 |
2.2 结果分析 | 第23-27页 |
2.2.1 真菌AW2017的形态学鉴定 | 第23-24页 |
2.2.2 真菌AW2017的分子生物学鉴定 | 第24-26页 |
2.2.3 真菌AW2017孢子悬浮液对二龄幼虫的毒杀作用 | 第26页 |
2.2.4 真菌AW2017孢子悬浮液对卵孵化的影响 | 第26-27页 |
2.3 总结与讨论 | 第27-28页 |
第三章 百岁兰曲霉对水稻禾本科根结线虫的作用机制评价 | 第28-36页 |
3.1 材料与方法 | 第28-31页 |
3.1.1 供试材料 | 第28页 |
3.1.2 水稻的培育与管理 | 第28页 |
3.1.3 主要试剂和耗材 | 第28-29页 |
3.1.4 AW2017孢子悬浮液的制备 | 第29页 |
3.1.5 拟禾本科根结线虫悬浮液的制备 | 第29页 |
3.1.6 AW2017防治拟禾本科根结线虫的盆栽试验 | 第29页 |
3.1.7 AW2017对拟禾本科根结线虫发育的影响 | 第29页 |
3.1.8 AW2017对拟禾本科根结线虫诱集作用的影响 | 第29-30页 |
3.1.9 AW2017对拟禾本科根结线虫巨细胞的影响 | 第30-31页 |
3.2 数据分析与处理 | 第31页 |
3.3 结果与分析 | 第31-34页 |
3.3.1 AW2017抑制拟禾本科根结线虫的发育 | 第31-32页 |
3.3.2 AW2017减少水稻对拟禾本科根结线虫的诱集 | 第32-33页 |
3.3.3 AW2017延缓拟禾本科根结线虫巨细胞的发育 | 第33-34页 |
3.4 小结与结论 | 第34-36页 |
第四章 百岁兰曲霉次生代谢产物500L液体发酵的培养工艺优化 | 第36-41页 |
4.1 材料与方法 | 第36-38页 |
4.1.1 供试材料与试剂 | 第36页 |
4.1.2 拟禾本科根结线虫悬浮液的制备 | 第36页 |
4.1.3 主要仪器 | 第36页 |
4.1.4 接种与培养 | 第36-37页 |
4.1.5 发酵过程的设计与取样 | 第37页 |
4.1.6 发酵滤液初步浓缩和干燥 | 第37-38页 |
4.1.7 500L液体深层发酵的扩大培养 | 第38页 |
4.2 结果与分析 | 第38-40页 |
4.2.1 摇瓶液体发酵到50L液体深层发酵的扩大培养 | 第38页 |
4.2.2 不同培养时间对百岁兰曲霉杀线活性的影响 | 第38-39页 |
4.2.3 从50L液体深层发酵到500L液体深层发酵的扩大培养 | 第39-40页 |
4.3 小结与结论 | 第40-41页 |
第五章 百岁兰曲霉代谢产物对水稻防御相关基因表达的影响 | 第41-54页 |
5.1 材料与方法 | 第41-44页 |
5.1.1 供试材料 | 第41页 |
5.1.2 主要仪器与试剂 | 第41页 |
5.1.3 水稻的培育与管理 | 第41页 |
5.1.4 AW2017孢子悬浮液的制备 | 第41-42页 |
5.1.5 拟禾本科根结线虫悬浮液的制备 | 第42页 |
5.1.6 水稻根中总RNA的提取 | 第42页 |
5.1.7 cDNA第一链的合成 | 第42-43页 |
5.1.8 防御相关基因实时荧光定量(qRT-PCR)分析 | 第43-44页 |
5.2 结果与分析 | 第44-51页 |
5.2.1 鉴定水稻根系总RNA提取的纯度与完整性 | 第44-45页 |
5.2.2 实时荧光定量PCR的可靠性分析 | 第45页 |
5.2.3 18个相关防御基因的相对表达量分析 | 第45-51页 |
5.2.3.1 真菌AW2017发酵液对水稻根系内乙烯信号途径的影响 | 第45-47页 |
5.2.3.2 真菌AW2017发酵液对水稻根系内油菜素内酯途径的影响 | 第47页 |
5.2.3.3 真菌AW2017发酵液对水稻中苯丙烷代谢的途径影响 | 第47-48页 |
5.2.3.4 真菌AW2017发酵液对水稻根系内水杨酸途径的影响 | 第48-49页 |
5.2.3.5 真菌AW2017发酵液对水稻根系内茉莉酸途径的影响 | 第49-50页 |
5.2.3.6 真菌AW2017发酵液对水稻根系内相关防御物质合成基因途径的影响 | 第50-51页 |
5.3 小结与结论 | 第51-54页 |
第六章 全文结论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-63页 |
附录 | 第63-65页 |
致谢 | 第65-67页 |
作者简历 | 第67页 |