| 中文摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 中英文缩略词表 | 第15-16页 |
| 引言 | 第16-18页 |
| 第一部分 理论研究 | 第18-36页 |
| 1 中医药治疗骨质疏松症临床研究的文献计量分析 | 第18-25页 |
| 1.1 资料与方法 | 第18-19页 |
| 1.1.1 文献来源 | 第18页 |
| 1.1.2 文献筛选 | 第18页 |
| 1.1.3 数据处理 | 第18-19页 |
| 1.2 结果 | 第19-23页 |
| 1.2.1 发表年份分布 | 第19页 |
| 1.2.2 发表单位分布 | 第19-20页 |
| 1.2.3 发表期刊分布 | 第20-21页 |
| 1.2.4 作者分布 | 第21-22页 |
| 1.2.5 基金分布 | 第22页 |
| 1.2.6 学科分布 | 第22-23页 |
| 1.2.7 关键词分布 | 第23页 |
| 1.3 讨论 | 第23-24页 |
| 1.4 小结 | 第24-25页 |
| 2 骨靶向治疗骨质疏松症的理论基础及研究现状 | 第25-32页 |
| 2.1 靶向治疗的中医理论基础 | 第25-27页 |
| 2.1.1 体内药物分布与归经 | 第26页 |
| 2.1.2 中医药与靶向治疗 | 第26-27页 |
| 2.2 骨质疏松症靶向治疗的药物 | 第27-31页 |
| 2.2.1 激素靶向 | 第27-28页 |
| 2.2.2 骨靶向 | 第28-30页 |
| 2.2.3 细胞及分子靶向 | 第30-31页 |
| 2.3 小结 | 第31-32页 |
| 3 蛇床子素抗骨质疏松的前期研究及本课题的研究思路 | 第32-36页 |
| 3.1 OST调控成骨细胞增殖分化的机制 | 第32-33页 |
| 3.2 OST调控破骨细胞分化的机制 | 第33-34页 |
| 3.3 NSC-OST胶束的设计研发基础 | 第34页 |
| 3.4 本课题的研究思路 | 第34-36页 |
| 第二部分 NSC-OST胶束合成工艺的优化 | 第36-44页 |
| 1 材料与方法 | 第36-38页 |
| 1.1 仪器设备 | 第36页 |
| 1.2 主要试剂及配制方法 | 第36-37页 |
| 1.3 主要实验方法 | 第37-38页 |
| 2 结果 | 第38-41页 |
| 2.1 NSC-OST胶束 | 第38页 |
| 2.2 NSC的化学合成、结构确证与表征 | 第38-40页 |
| 2.3 OST分析方法 | 第40-41页 |
| 2.4 NSC-OST胶束制备工艺优化 | 第41页 |
| 3 讨论 | 第41-43页 |
| 4 小结 | 第43-44页 |
| 第三部分 NSC-OST胶束骨靶向性实验 | 第44-51页 |
| 1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 1.1 仪器设备 | 第44页 |
| 1.2 实验动物 | 第44页 |
| 1.3 主要试剂及配制方法 | 第44-45页 |
| 1.4 主要实验方法 | 第45-46页 |
| 1.5 统计分析 | 第46页 |
| 2 结果 | 第46-49页 |
| 2.1 吸附法体外测定NSC-OST胶束的骨靶向性 | 第46页 |
| 2.2 OST体内分布实验测定NSC-OST的亲骨性 | 第46-49页 |
| 3 讨论 | 第49-50页 |
| 4 小结 | 第50-51页 |
| 第四部分 NSC-OST胶束对体外培养大鼠成骨、破骨细胞的影响 | 第51-66页 |
| 1 材料与方法 | 第51-57页 |
| 1.1 仪器设备 | 第51-52页 |
| 1.2 主要试剂及配制方法 | 第52-53页 |
| 1.3 主要实验方法 | 第53-57页 |
| 1.3.1 成骨细胞体外分离培养及鉴定 | 第53页 |
| 1.3.2 NSC-OST胶束对成骨细胞的影响 | 第53-55页 |
| 1.3.3 骨髓单核细胞体外诱导法建立破骨细胞培养体系 | 第55页 |
| 1.3.4 NSC-OST胶束对破骨细胞的影响 | 第55-57页 |
| 1.4 统计分析 | 第57页 |
| 2 结果 | 第57-64页 |
| 2.1 成骨细胞体外分离培养及鉴定 | 第57-58页 |
| 2.2 CCK-8法检测NSC-OST胶束对成骨细胞增殖的影响 | 第58页 |
| 2.3 NSC-OST胶束对成骨细胞分化的影响 | 第58-60页 |
| 2.3.1 碱性磷酸酶活力 | 第58-59页 |
| 2.3.2 成骨细胞BMP信号通路相关蛋白表达 | 第59-60页 |
| 2.4 NSC-OST胶束对破骨细胞活性的影响 | 第60页 |
| 2.5 NSC-OST胶束对破骨细胞分化的影响 | 第60-64页 |
| 2.5.1 骨吸收功能 | 第60-61页 |
| 2.5.2 TRAP表达 | 第61-64页 |
| 2.6 NSC-OST胶束对破骨细胞凋亡的影响 | 第64页 |
| 3 讨论 | 第64-65页 |
| 4 小结 | 第65-66页 |
| 第五部分 NSC-OST胶束防治去势大鼠骨质疏松症的机制研究 | 第66-80页 |
| 1 材料与方法 | 第66-70页 |
| 1.1 仪器设备 | 第66页 |
| 1.2 实验动物 | 第66-67页 |
| 1.3 主要试剂及配制方法 | 第67页 |
| 1.4 主要实验方法 | 第67-70页 |
| 1.5 统计分析 | 第70页 |
| 2 结果 | 第70-77页 |
| 2.1 体重及子宫指数的变化 | 第70-71页 |
| 2.2 血清生化指标的检测 | 第71-72页 |
| 2.3 骨组织病理学检测 | 第72-73页 |
| 2.4 Micro-CT检测骨微结构及骨密度 | 第73-74页 |
| 2.5 生物力学仪检测股骨力学性能 | 第74-76页 |
| 2.6 荧光定量PCR检测NFATc1、CTSK、MMP-9、TRAP mRNA表达 | 第76-77页 |
| 2.7 免疫组化检测NFATc1、c-fos、CTSK蛋白表达 | 第77页 |
| 3 讨论 | 第77-79页 |
| 4 小结 | 第79-80页 |
| 结语 | 第80-81页 |
| 1 结论 | 第80页 |
| 2 创新之处 | 第80页 |
| 3 不足与展望 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-89页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 作者简介 | 第92页 |
