| 摘要 | 第3-7页 |
| abstract | 第7-11页 |
| 中英文缩略词表 | 第14-16页 |
| 第1章 引言 | 第16-19页 |
| 第2章 材料与方法 | 第19-32页 |
| 2.1 材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 主要实验试剂及材料 | 第19-20页 |
| 2.1.2 细胞 | 第20页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-31页 |
| 2.2.1 器材的准备 | 第20-21页 |
| 2.2.2 主要溶液的配制 | 第21-22页 |
| 2.2.3 细胞培养及实验分组 | 第22页 |
| 2.2.4 MTT法检测细胞活力 | 第22-23页 |
| 2.2.5 细胞总蛋白提取及核质分离 | 第23页 |
| 2.2.6 Westernblot分析NF-κB/p65,IκBα和Jmjd3的表达变化 | 第23-24页 |
| 2.2.7 Millipore化学发光试剂盒检测胞核NF-κB/p65蛋白活性 | 第24-25页 |
| 2.2.8 RNA提取及RT-qPCR | 第25-28页 |
| 2.2.9 ChIP-qPCR | 第28-31页 |
| 2.2.10 ELISA | 第31页 |
| 2.3 统计学处理 | 第31-32页 |
| 第3章 结果 | 第32-39页 |
| 3.1 氯化镧对HUVECS活力的影响 | 第32页 |
| 3.2 氯化镧抑制LPS诱导的HUVECSNF-ΚB/P65核转位 | 第32-33页 |
| 3.3 氯化镧对LPS激活HUVECs Jmjd3的抑制作用 | 第33-34页 |
| 3.4 氯化镧改变NF-ΚB/P65与促炎基因启动子区的结合 | 第34-35页 |
| 3.5 氯化镧改变JMJD3在促炎基因启动子区的富集量 | 第35-36页 |
| 3.6 氯化镧对促炎基因启动子区H3K27甲基化的影响 | 第36-37页 |
| 3.7 氯化镧对促炎基因MRNA表达的影响 | 第37-38页 |
| 3.8 氯化镧抑制LPS诱导原代HUVECS促炎性因子的分泌 | 第38-39页 |
| 第4章 讨论 | 第39-43页 |
| 第5章 结论 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第48-49页 |
| 综述 | 第49-57页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
