| 摘要 | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第8-19页 |
| 1.1 叶片衰老 | 第8-13页 |
| 1.1.1 叶片衰老的生理变化 | 第8-9页 |
| 1.1.2 叶片衰老起始的信号 | 第9-10页 |
| 1.1.3 叶片衰老的信号转导 | 第10-13页 |
| 1.2 叶绿素降解 | 第13-17页 |
| 1.2.1 叶绿素的降解途径 | 第13-17页 |
| 1.2.2 PPH脱植基的植物 | 第17页 |
| 1.3 脱镁叶绿素酶(PPH)的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 本研究的目的及意义 | 第18-19页 |
| 第二章 小麦TaPPH基因的分离与序列分析 | 第19-35页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第19-26页 |
| 2.1.1 试剂与仪器 | 第19页 |
| 2.1.2 植物材料的培养与处理 | 第19页 |
| 2.1.3 植物总RNA的提取与检测 | 第19-20页 |
| 2.1.4 反转录PCR(RT-PCR) | 第20-21页 |
| 2.1.5 Rapid Amplication of cDNA End (RACE) | 第21-25页 |
| 2.1.6 DNA测序 | 第25页 |
| 2.1.7 PCR引物 | 第25-26页 |
| 2.1.8 生物信息学分析 | 第26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-34页 |
| 2.2.1 小麦叶片RNA的提取及cDNA合成 | 第26-27页 |
| 2.2.2 TaPPH基因cDNA的分离 | 第27-29页 |
| 2.2.3 TaPPH全长cDNA的分离 | 第29页 |
| 2.2.4 TaPPH的序列分析 | 第29-34页 |
| 2.3 讨论 | 第34-35页 |
| 第三章 小麦TaPPH基因的表达特性分析 | 第35-42页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第35-37页 |
| 3.1.1 试剂与仪器 | 第35页 |
| 3.1.2 实验材料的培养与处理 | 第35页 |
| 3.1.3 定量PCR | 第35-36页 |
| 3.1.4 qPCR的参照基因 | 第36-37页 |
| 3.2 结果与分析 | 第37-40页 |
| 3.2.1 黑暗诱导下TaPPH的表达分析 | 第37页 |
| 3.2.2 激素诱导下TaPPH的表达分析 | 第37-39页 |
| 3.2.3 干旱胁迫下TaPPH的表达分析 | 第39-40页 |
| 3.3 讨论 | 第40-42页 |
| 3.3.1 PPH受黑暗诱导表达 | 第40页 |
| 3.3.2 PPH受植物激素的调控 | 第40-41页 |
| 3.3.3 PPH对干旱胁迫的响应 | 第41-42页 |
| 第四章 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-52页 |
| Abstract | 第52-53页 |
| 致谢 | 第54页 |