| 中英文缩略表 | 第12-14页 |
| 摘要 | 第14-15页 |
| ABSTRACT | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第17-49页 |
| 1.1 脑卒中概述 | 第17-18页 |
| 1.2 脑卒中定义及分类 | 第18页 |
| 1.3 脑卒中分型 | 第18-19页 |
| 1.3.1 缺血性脑卒中分型 | 第18-19页 |
| 1.3.2 出血性脑卒中分型 | 第19页 |
| 1.4 脑卒中的危险因素 | 第19-20页 |
| 1.5 脑卒中诊断及生物学标记 | 第20-21页 |
| 1.6 脑卒中发病机制 | 第21-24页 |
| 1.6.1 能量代谢障碍 | 第22页 |
| 1.6.2 兴奋性氨基酸中毒 | 第22页 |
| 1.6.3 脑细胞水肿 | 第22-23页 |
| 1.6.4 炎性细胞浸润 | 第23页 |
| 1.6.5 抑制新生血管 | 第23页 |
| 1.6.6 神经元细胞凋亡 | 第23-24页 |
| 1.7 脑卒中的药物治疗 | 第24-31页 |
| 1.7.1 溶栓类药物 | 第24-27页 |
| 1.7.2 降纤和抗凝类药物 | 第27页 |
| 1.7.3 抗血小板聚集类药物 | 第27-28页 |
| 1.7.4 神经细胞保护药物 | 第28-30页 |
| 1.7.5 他汀类药物 | 第30页 |
| 1.7.6 中药 | 第30-31页 |
| 1.8 血管新生与脑卒中 | 第31-36页 |
| 1.8.1 VEGF与血管新生 | 第32-34页 |
| 1.8.2 EPO/EPOR与血管新生 | 第34-35页 |
| 1.8.3 STAT3与血管新生 | 第35-36页 |
| 1.9 丹参缩酚酸B抗脑缺血 | 第36-38页 |
| 1.10 本论文主要研究工作 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-49页 |
| 第二章 SMND-309促进人脐静脉内皮细胞血管新生作用及机制研究 | 第49-81页 |
| 2.1 前言 | 第49-50页 |
| 2.2 试验材料和仪器 | 第50-54页 |
| 2.2.1 化学试剂 | 第50-52页 |
| 2.2.2 主要溶液配制方法 | 第52-53页 |
| 2.2.3 主要仪器与材料 | 第53-54页 |
| 2.3 试验方法 | 第54-63页 |
| 2.3.1 细胞分离与培养 | 第54-55页 |
| 2.3.2 细胞增殖试验 | 第55-56页 |
| 2.3.2.1 细胞接种浓度的确定 | 第55页 |
| 2.3.2.2 细胞增殖试验 | 第55-56页 |
| 2.3.3 细胞黏附试验 | 第56页 |
| 2.3.4 细胞迁移试验 | 第56-58页 |
| 2.3.4.1 划痕法 | 第56-57页 |
| 2.3.4.2 Transwell法 | 第57-58页 |
| 2.3.5 微管样结构形成试验 | 第58页 |
| 2.3.6 Western blot分析信号通路 | 第58-60页 |
| 2.3.6.1 Western blot样品的制备 | 第58页 |
| 2.3.6.2 Western blot试验步骤 | 第58-60页 |
| 2.3.7 shRNA法制备HUVEC~(EPOR-) | 第60-63页 |
| 2.3.7.1 HUVEC~(EPOR-)的制备 | 第60-61页 |
| 2.3.7.2 HUVEC~(EPOR-)总RNA的提取 | 第61页 |
| 2.3.7.3 RT-PCR鉴定HUVEC~(EPOR-) | 第61-63页 |
| 2.3.8 抑制剂分析信号通路 | 第63页 |
| 2.3.9 统计与分析 | 第63页 |
| 2.4 试验结果 | 第63-74页 |
| 2.4.1 HUVEC分离与培养 | 第63-64页 |
| 2.4.2 SMND-309对细胞增殖的影响 | 第64-65页 |
| 2.4.3 SMND-309对细胞黏附的作用 | 第65-66页 |
| 2.4.4 SMND-309对细胞迁移的作用 | 第66-68页 |
| 2.4.5 SMND-309对HUVEC微管样结构形成的影响 | 第68-70页 |
| 2.4.6 SMND-309对信号分子表达的影响 | 第70-71页 |
| 2.4.7 制备HUVEC~(EPOR-) | 第71页 |
| 2.4.8 SMND-309诱导血管新生相关的信号通路分析 | 第71-74页 |
| 2.5 讨论 | 第74-77页 |
| 2.6 本章小结 | 第77页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 第三章 SMND-309促进脑缺血大鼠血管新生作用及机制研究 | 第81-124页 |
| 3.1 前言 | 第81-83页 |
| 3.2 实验材料和仪器 | 第83-87页 |
| 3.2.1 化学试剂 | 第83-85页 |
| 3.2.2 实验动物 | 第85页 |
| 3.2.3 主要溶液配制方法 | 第85-86页 |
| 3.2.4 主要仪器与材料 | 第86-87页 |
| 3.3 试验方法 | 第87-96页 |
| 3.3.1 大鼠局灶性脑缺血再灌注模型的建立 | 第87-88页 |
| 3.3.2 SMND-309抗脑缺血的量效关系研究 | 第88-91页 |
| 3.3.2.1 动物分组与给药 | 第88-89页 |
| 3.3.2.2 Garcia JH法大鼠神经功能评分 | 第89页 |
| 3.3.2.3 平衡木行走实验评分 | 第89-90页 |
| 3.3.2.4 TTC染色法测定脑梗死面积 | 第90页 |
| 3.3.2.5 缺血大鼠脑含水量测定 | 第90-91页 |
| 3.3.3 SMND-309抗脑缺血的时效关系研究 | 第91页 |
| 3.3.4 SMND-309长期抗脑缺血作用研究 | 第91页 |
| 3.3.5 抑制剂对SMND-309长期抗脑缺血作用的机制研究 | 第91-96页 |
| 3.3.5.1 试验分组 | 第91-92页 |
| 3.3.5.2 免疫组化脑组织取材、包埋及切片 | 第92-93页 |
| 3.3.5.3 免疫组织化学分析 | 第93-94页 |
| 3.3.5.4 Western Blot半定量分析 | 第94-95页 |
| 3.3.5.5 神经元NeuN染色 | 第95页 |
| 3.3.5.6 Golgi Staining | 第95-96页 |
| 3.3.6 统计分析 | 第96页 |
| 3.4 试验结果 | 第96-114页 |
| 3.4.1 SMND-309抗脑缺血的量效关系研究 | 第96-100页 |
| 3.4.1.1 Garcia JH大鼠神经功能评分 | 第96-98页 |
| 3.4.1.2 平衡木行走实验 | 第98-99页 |
| 3.4.1.3 TTC染色法测定脑梗死面积 | 第99-100页 |
| 3.4.1.4 脑含水量测定 | 第100页 |
| 3.4.2 SMND-309抗脑缺血的时效关系研究 | 第100-102页 |
| 3.4.3 SMND-309长期抗脑缺血作用的神经功能评分 | 第102页 |
| 3.4.4 SMND-309抗脑缺血作用的血管新生机制研究 | 第102-114页 |
| 3.3.4.1 抑制剂对Garcia JH神经功能评分的影响 | 第103-105页 |
| 3.4.4.2 SMND-309对MCAO大鼠CD31表达的影响 | 第105页 |
| 3.4.4.3 SMND-309对VEGF表达的影响 | 第105-108页 |
| 3.4.4.4 SMND-309对EPO/EPOR/p-EPOR表达的影响 | 第108页 |
| 3.4.4.5 SMND-309对STAT3/p-STAT3表达的影响 | 第108页 |
| 3.4.4.6 SMND-309对VEGF表达的影响 | 第108-109页 |
| 3.3.4.7 NeuN染色检测SMND-309对神经元的保护 | 第109-112页 |
| 3.4.4.8 Golgi Staining分析SMND-309对神经轴突的恢复 | 第112-114页 |
| 3.5 讨论 | 第114-120页 |
| 3.5.1 动物模型的选择 | 第114页 |
| 3.5.2 神经功能评分标准的选择 | 第114-115页 |
| 3.5.3 SMND-309抗大鼠缺血再灌注损伤作用 | 第115-117页 |
| 3.5.3.1 量效关系 | 第115-116页 |
| 3.5.3.2 时效关系 | 第116页 |
| 3.5.3.3 长期用药的抗脑缺血作用 | 第116-117页 |
| 3.5.4 SMND-309对缺血组织血管新生的影响 | 第117-118页 |
| 3.5.5 SMND-309促进血管新生的机制 | 第118-119页 |
| 3.5.6 SMND-309对大脑神经细胞的保护和恢复 | 第119-120页 |
| 3.6 本章小结 | 第120页 |
| 参考文献 | 第120-124页 |
| 全文总结 | 第124-125页 |
| 致谢 | 第125-126页 |
| 作者简历及发表文章 | 第126-128页 |
| 学位论文自愿预先检测申请表 | 第128页 |
