| 致谢 | 第5-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| 文献综述 | 第11-27页 |
| 引言 | 第11页 |
| 1 病原学研究进展 | 第11-13页 |
| 1.1 分类学 | 第11-12页 |
| 1.2 形态学 | 第12-13页 |
| 1.3 理化特性 | 第13页 |
| 1.4 遗传变异 | 第13页 |
| 2 生态学研究进展 | 第13-23页 |
| 2.1 宿主动物 | 第13-21页 |
| 2.1.1 野生反刍动物 | 第15页 |
| 2.1.2 小型哺乳类动物 | 第15-17页 |
| 2.1.3 食虫动物 | 第17-19页 |
| 2.1.4 人 | 第19页 |
| 2.1.5 其他动物种类 | 第19-21页 |
| 2.1.6 驯养动物 | 第21页 |
| 2.2 传播媒介 | 第21-22页 |
| 2.3 传播途径 | 第22页 |
| 2.4 地理分布和遗传变异 | 第22-23页 |
| 3 发病机理 | 第23-24页 |
| 3.1 AP侵染宿主细胞 | 第23页 |
| 3.2 AP在宿主细胞内形成包涵体 | 第23-24页 |
| 3.3 AP破坏宿主细胞防御机制 | 第24页 |
| 3.4 AP影响细胞凋亡和自噬过程 | 第24页 |
| 4 临床症状 | 第24页 |
| 5 诊断方法 | 第24-26页 |
| 5.1 临床症状 | 第24-25页 |
| 5.2 显微镜病原检查与鉴定 | 第25页 |
| 5.3 聚合酶链式反应（PCR） | 第25页 |
| 5.4 血清学检测 | 第25-26页 |
| 5.5 病理学 | 第26页 |
| 6 防治 | 第26-27页 |
| 第一部分 我国部分地区不同宿主动物无浆体感染情况调查 | 第27-40页 |
| 引言 | 第27页 |
| 1 材料与方法 | 第27-30页 |
| 1.1 材料 | 第27-29页 |
| 1.1.1 样品来源与采集 | 第27页 |
| 1.1.2 主要仪器及耗材 | 第27-28页 |
| 1.1.3 主要试剂及其制备 | 第28-29页 |
| 1.2 方法 | 第29-30页 |
| 1.2.1 DNA提取 | 第29页 |
| 1.2.2 巢式PCR扩增 | 第29-30页 |
| 1.2.3 PCR预混体系 | 第30页 |
| 1.2.4 PCR扩增产物鉴定 | 第30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-37页 |
| 2.1 PCR扩增结果 | 第30-32页 |
| 2.2 不同地区不同物种无浆体感染情况 | 第32-33页 |
| 2.2.1 不同地区羊无浆体感染情况 | 第32页 |
| 2.2.2 牛无浆体感染情况 | 第32页 |
| 2.2.3 不同地区犬无浆体感染情况 | 第32-33页 |
| 2.2.4 郑州市动物园野生动物无浆体感染情况 | 第33页 |
| 2.3 不同品种动物三种无浆体的感染情况 | 第33-36页 |
| 2.3.1 不同品种羊无浆体的感染情况 | 第33页 |
| 2.3.2 不同品种犬无浆体感染情况 | 第33-34页 |
| 2.3.3 不同品种野生动物无浆体感染情况 | 第34-36页 |
| 2.4 不同饲养模式动物三种无浆体感染情况 | 第36页 |
| 2.4.1 不同饲养模式下羊无浆体感染情况 | 第36页 |
| 2.4.2 不同饲养模式下犬无浆体感染情况 | 第36页 |
| 2.5 无浆体混合感染情况 | 第36-37页 |
| 3 结论与讨论 | 第37-40页 |
| 3.1 河南、云南、贵州地区均有无浆体感染且感染率存在较大差异 | 第37页 |
| 3.2 羊比犬等动物无浆体感染率更高 | 第37-38页 |
| 3.3 在犬血样中首次检出A. ovis和在我国犬中首次检出A. bovis | 第38页 |
| 3.4 首次于长颈鹿血液中检出A. phagocytophilum，A. bovis | 第38页 |
| 3.5 山羊的无浆体感染率明显高于绵羊 | 第38-39页 |
| 3.6 不同饲养方式动物无浆体的感染率存在差异 | 第39页 |
| 3.7 无浆体混合感染情况较为普遍 | 第39-40页 |
| 第二部分 基于 16S r RNA/MSP4基因的三种无浆体种系发育分析 | 第40-50页 |
| 引言 | 第40页 |
| 1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 1.1 材料 | 第40页 |
| 1.1.1 样品来源 | 第40页 |
| 1.2 主要仪器及耗材 | 第40页 |
| 1.3 主要试剂及制备 | 第40页 |
| 1.4 样品检查方法 | 第40-41页 |
| 1.4.1 DNA提取 | 第40页 |
| 1.4.2 PCR扩增 | 第40页 |
| 1.4.3 PCR预混体系 | 第40-41页 |
| 1.4.4 PCR扩增产物鉴定 | 第41页 |
| 1.5 基因测序及序列分析 | 第41页 |
| 1.5.1 巢式PCR产物测序 | 第41页 |
| 1.5.2 基因测序结果分析 | 第41页 |
| 1.5.3 遗传进化分析 | 第41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-48页 |
| 2.1 A. phagocytophilum序列同源性分析和种系发育分析 | 第41-43页 |
| 2.2 A. bovis序列同源性分析和种系发育分析 | 第43-45页 |
| 2.3 A. ovis序列同源性分析和种系发育分析 | 第45-48页 |
| 3 结论与讨论 | 第48-50页 |
| 3.1 发现犬源、羊源A. phagocytophilum 16S r RNA新基因型 | 第48-49页 |
| 3.2 在我国首次发现长颈鹿源A. phagocytophilum 16S r RNA新基因型 | 第49页 |
| 3.3 发现犬源、羊源A. bovis 16S r RNA新基因型 | 第49页 |
| 3.4 在我国首次发现长颈鹿源A. bovis 16S r RNA新基因型 | 第49页 |
| 3.5 A.ovis可感染多种宿主动物且MSP4基因型存在多样性 | 第49-50页 |
| 3.6 首次在犬中发现A.ovis MSP4基因，且存在新基因型 | 第50页 |
| 创新点 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 英文摘要 | 第60-62页 |
