| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第15-25页 |
| 1.1 花生连作障碍问题 | 第15页 |
| 1.2 花生连作障碍的主要原因 | 第15-19页 |
| 1.2.1 土壤有毒化感物质的积累 | 第15-17页 |
| 1.2.2 土壤微生物群落结构失衡 | 第17-18页 |
| 1.2.3 土壤花生病原菌的增殖 | 第18页 |
| 1.2.4 土壤酶活性的降低 | 第18页 |
| 1.2.5 土壤有效养分失衡 | 第18-19页 |
| 1.3 花生连作障碍的防治措施 | 第19页 |
| 1.4 使用植物内生真菌克服花生连作障碍 | 第19-24页 |
| 1.4.1 前期已经研究的内生菌克服连作障碍机理 | 第20-21页 |
| 1.4.2 推测还可能存在的内生真菌克服连作障碍机理 | 第21-24页 |
| 1.5 论文科学假说与研究内容 | 第24-25页 |
| 1.5.1 论文的科学假说 | 第24页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 第2章 内生真菌B3对花生根系分泌物的调控及其对根瘤菌共生结瘤的影响 | 第25-54页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-30页 |
| 2.1.1 供试材料与培养基 | 第25-26页 |
| 2.1.2 内生真菌B3与花生根部共生体系的建立 | 第26页 |
| 2.1.3 内生真菌B3与花生根部共生检测 | 第26-27页 |
| 2.1.4 花生根系分泌物收集 | 第27-28页 |
| 2.1.5 花生根系分泌物组分鉴定 | 第28页 |
| 2.1.6 花生根系分泌物对花生根瘤菌结瘤特性的影响 | 第28-30页 |
| 2.2 结果与分析 | 第30-51页 |
| 2.2.1 内生真菌B3在花生根部定殖 | 第30-31页 |
| 2.2.2 B3接种组和未接组根系分泌物对根瘤菌生长的影响 | 第31页 |
| 2.2.3 B3接种组和未接B3组根系分泌物对根瘤菌生物膜形成的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.4 B3接种组和未接B3组根系分泌物对根瘤菌趋化性的影响 | 第32-36页 |
| 2.2.5 B3接种组和未接B3组分泌物对根瘤菌nodC基因表达的影响 | 第36页 |
| 2.2.6 B3接种组和未接B3组分泌物处理根瘤菌后对花生结瘤数量的影响 | 第36-39页 |
| 2.2.7 内生真菌B3对花生根系分泌物中酚酸和黄酮含量的影响 | 第39页 |
| 2.2.8 内生真菌B3对花生根系分泌物中有机酸含量的影响 | 第39-44页 |
| 2.2.9 内生真菌B3对花生根系分泌物中氨基酸含量的影响 | 第44-46页 |
| 2.2.10 单一有机酸组分对根瘤菌生长,被膜的影响 | 第46-47页 |
| 2.2.11 单一酚酸组分对根瘤菌生长,被膜的影响 | 第47页 |
| 2.2.12 单一有黄酮组分对根瘤菌生长,被膜的影响 | 第47-48页 |
| 2.2.13 单一氨基酸组分对根瘤菌生长,被膜的影响 | 第48页 |
| 2.2.14 单一酚酸、黄酮、有机酸和氨基酸组分对根瘤菌趋化性的影响 | 第48-49页 |
| 2.2.15 黄酮组分对根瘤菌nodC基因表达及结瘤的影响 | 第49-51页 |
| 2.3 讨论 | 第51-54页 |
| 2.3.1 接种内生菌B3后花生根系分泌物对根瘤菌结瘤能力的调控作用 | 第51页 |
| 2.3.2 接种内生菌B3对根系分泌物组分的影响 | 第51-52页 |
| 2.3.3 根系分泌物中单一组分对根瘤菌结瘤能力的影响 | 第52-54页 |
| 第3章 内生菌B3漆酶基因的克隆表达及对花生连作土壤修复 | 第54-74页 |
| 3.1 材料与方法 | 第54-58页 |
| 3.1.1 化学试剂和酶 | 第54页 |
| 3.1.2 菌株、载体和培养基 | 第54-55页 |
| 3.1.3 内生菌B3基因组DNA和总RNA提取 | 第55页 |
| 3.1.4 内生菌B3全长漆酶基因(lacB3)的克隆 | 第55页 |
| 3.1.5 内生菌B3漆酶基因(lacB3)全长cDNA的克隆 | 第55-56页 |
| 3.1.6 内生菌B3漆酶基因(lacB3)生物信息学分析 | 第56页 |
| 3.1.7 内生菌B3漆酶基因在粟酒裂殖酵母中异源表达和纯化 | 第56-57页 |
| 3.1.8 漆酶活性测定 | 第57页 |
| 3.1.9 重组漆酶rLACB3的生物化学特性 | 第57页 |
| 3.1.10 添加纯化重组漆酶rLACB3的花生盆栽试验 | 第57-58页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第58-74页 |
| 3.2.1 内生菌B3漆酶基因lacB3的克隆和测序分析 | 第58-64页 |
| 3.2.2 rLACB3在粟酒裂殖酵母中的表达与纯化 | 第64页 |
| 3.2.3 重组漆酶rLACB3的生物化学特性 | 第64-71页 |
| 3.2.4 重组漆酶rLACB3对花生生长,土壤微生物和土壤酚酸的影响 | 第71-74页 |
| 第4章 木犀草素对花生的化感作用及内生菌B3对其降解 | 第74-104页 |
| 4.1 材料与方法 | 第74-84页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第74-75页 |
| 4.1.2 木犀草素从花生残茬中的释放 | 第75页 |
| 4.1.3 土壤降解过程中残茬中的木犀草素含量变化 | 第75页 |
| 4.1.4 木犀草素含量测定方法 | 第75-76页 |
| 4.1.5 木犀草素对花生幼苗生长的化感作用 | 第76-78页 |
| 4.1.6 木犀草素对根瘤菌结瘤能力的影响 | 第78-80页 |
| 4.1.7 内生真菌B3在液体培养基中对木犀草素的降解 | 第80页 |
| 4.1.8 土壤中内生真菌对木犀草素的降解 | 第80-81页 |
| 4.1.9 内生真B3降解木犀草素过程中降解产物的检测 | 第81页 |
| 4.1.10 内生菌B3降解关键酶活性测定 | 第81-82页 |
| 4.1.11 原儿茶酸3,4-双加氧酶(Prc)和偏苯三酚1,2-双加氧酶(Hyd)全长cDNA的克隆 | 第82页 |
| 4.1.12 prc和hyd基因表达的qRT-PCR检测 | 第82-83页 |
| 4.1.13 数据处理与统计分析 | 第83-84页 |
| 4.2 结果与分析 | 第84-100页 |
| 4.2.1 木犀草素在花生残茬中的释放 | 第84页 |
| 4.2.2 木犀草素对花生种子胚根伸长和幼苗生长的影响 | 第84-86页 |
| 4.2.3 木犀草素对花生结瘤和豆血红蛋白含量 | 第86页 |
| 4.2.4 木犀草素对根际土壤脱氢酶活性和土壤微生物量碳(SMBC)含量影响 | 第86页 |
| 4.2.5 木犀草素对根际土壤细菌和真菌含量影响 | 第86页 |
| 4.2.6 木犀草素对花生根际土壤细菌和真菌群落结构影响 | 第86-89页 |
| 4.2.7 木犀草素对花生根瘤菌结瘤能力的影响 | 第89-90页 |
| 4.2.8 木犀草素浓度对内生真菌体外降解的影响 | 第90页 |
| 4.2.9 内生真菌在纯培养和土壤条件下对木犀草素的降解 | 第90-92页 |
| 4.2.10 内生真菌降解木犀草素中间降解产物鉴定 | 第92-95页 |
| 4.2.11 芳香环裂解双加氧酶活性动态变化 | 第95-97页 |
| 4.2.12 prc和hyd基因克隆和mRNA表达分析 | 第97-100页 |
| 4.2.13 内生菌B3对木犀草素的降解途径 | 第100页 |
| 4.3 讨论 | 第100-104页 |
| 4.3.1 木犀草素在土壤中的释放 | 第100页 |
| 4.3.2 木犀草素对花生幼苗生长影响 | 第100-102页 |
| 4.3.3 木犀草素对土壤脱氢酶,SMBC和土壤微生物的影响 | 第102页 |
| 4.3.4 木犀草素对花生根瘤菌结瘤能力的影响 | 第102页 |
| 4.3.5 内生菌B3在摇瓶和土壤中降解木犀草素 | 第102-103页 |
| 4.3.6 内生菌B3对木犀草素降解途径 | 第103-104页 |
| 第5章 白藜芦醇对花生化感作用及内生菌B3对其降解 | 第104-125页 |
| 5.1 材料与方法 | 第104-109页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第104-105页 |
| 5.1.2 白藜芦醇从花生残茬中的释放 | 第105页 |
| 5.1.3 土壤降解过程中残茬中的白藜芦醇含量变化 | 第105页 |
| 5.1.4 白藜芦醇含量测定方法 | 第105页 |
| 5.1.5 白藜芦醇对花生幼苗生长的化感作用 | 第105-106页 |
| 5.1.6 白藜芦醇对根瘤菌结瘤能力的影响 | 第106页 |
| 5.1.7 内生真菌B3在液体培养基中对白藜芦醇的降解 | 第106-107页 |
| 5.1.8 土壤中内生真菌对白藜芦醇的降解 | 第107页 |
| 5.1.9 内生真B3降解白藜芦醇过程中降解产物的检测 | 第107-108页 |
| 5.1.10 内生菌B3白藜芦醇裂解酶活性测定 | 第108页 |
| 5.1.11 白藜芦醇裂解酶(Res)全长cDNA的克隆 | 第108-109页 |
| 5.1.12 res基因表达的qRT-PCR检测 | 第109页 |
| 5.1.13 数据处理与统计分析 | 第109页 |
| 5.2 结果与分析 | 第109-123页 |
| 5.2.1 白藜芦醇在花生残茬中的释放 | 第109-110页 |
| 5.2.2 白藜芦醇对花生种子胚根伸长和幼苗生长的影响 | 第110-112页 |
| 5.2.3 白藜芦醇对花生结瘤和豆血红蛋白含量 | 第112页 |
| 5.2.4 白藜芦醇对根际土壤脱氢酶活性和SMBC含量影响 | 第112页 |
| 5.2.5 白藜芦醇对根际土壤细菌和真菌含量影响 | 第112-113页 |
| 5.2.6 白藜芦醇对花生根际土壤真菌和细菌群落结构影响 | 第113-115页 |
| 5.2.7 白藜芦醇对花生根瘤菌结瘤能力的影响 | 第115页 |
| 5.2.8 白藜芦醇浓度对内生真菌体外降解的影响 | 第115-116页 |
| 5.2.9 内生真菌在纯培养和土壤条件下对白藜芦醇的降解 | 第116-117页 |
| 5.2.10 内生真菌降解白藜芦醇中间降解产物鉴定 | 第117-118页 |
| 5.2.11 白藜芦醇裂解酶活性动态变化 | 第118页 |
| 5.2.12 res基因克隆和mRNA表达分析 | 第118-122页 |
| 5.2.13 内生菌B3对白藜芦醇的降解途径 | 第122-123页 |
| 5.3 讨论 | 第123-125页 |
| 5.3.1 花生残茬中白藜芦醇在土壤腐解条件下的释放 | 第123页 |
| 5.3.2 白藜芦醇对花生幼苗生长、结瘤及土壤微生物特性的影响 | 第123-124页 |
| 5.3.3 内生菌B3对白藜芦醇降解能力及降解途径 | 第124-125页 |
| 全文总结 | 第125-127页 |
| 参考文献 | 第127-138页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第138-139页 |
| 致谢 | 第139页 |
