| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略表 | 第12-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-22页 |
| 1.1 参与水稻分蘖芽形成的相关基因及调节途径的研究进展 | 第13-15页 |
| 1.1.1 APC/C-MOC1参与的水稻分蘖调节途径 | 第13-14页 |
| 1.1.2 LAX/SPA参与调控水稻腋生分生组织的形成 | 第14页 |
| 1.1.3 TAB1-OSH1参与调控水稻侧生分生组织的形成 | 第14-15页 |
| 1.1.4 BRs(类固醇类激素油菜素内酯)参与的水稻分蘖调节途径 | 第15页 |
| 1.2 参与水稻分蘖芽伸长的相关基因及调节途径的研究进展 | 第15-20页 |
| 1.2.1 独脚金内酯(SL)的生物合成途径 | 第15-16页 |
| 1.2.2 独脚金内酯(SL)的信号途径 | 第16-18页 |
| 1.2.3 OsMADS57–OsMIR444a调节途径 | 第18-19页 |
| 1.2.4 成花素蛋白Hd3a参与的水稻分蘖调节途径 | 第19页 |
| 1.2.5 其它参与水稻分蘖的基因 | 第19-20页 |
| 1.3 植物微管蛋白基因研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3.1 植物微管蛋白的基因家族 | 第20页 |
| 1.3.2 植物微管蛋白突变体分析 | 第20-21页 |
| 1.3.3 植物微管蛋白的功能 | 第21页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第21-22页 |
| 第二章 水稻寡分蘖突变体RCN20的基因克隆与功能研究 | 第22-64页 |
| 2.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-41页 |
| 2.2.1 农艺性状调查 | 第22页 |
| 2.2.2 分蘖芽大小观察 | 第22页 |
| 2.2.3 分蘖芽石蜡切片观察 | 第22-23页 |
| 2.2.4 分蘖芽扫描电镜观察 | 第23页 |
| 2.2.5 免疫荧光分析 | 第23-24页 |
| 2.2.6 遗传群体的构建与分析 | 第24页 |
| 2.2.7 基因定位与克隆 | 第24-27页 |
| 2.2.8 生物信息学分析 | 第27页 |
| 2.2.9 目的基因功能互补验证 | 第27-29页 |
| 2.2.10 基因表达模式分析 | 第29-31页 |
| 2.2.11 电泳迁移率实验(EMSA) | 第31-34页 |
| 2.2.12 植物染色质免疫沉淀技术(ChIP) | 第34-39页 |
| 2.2.13 转录活性测定 | 第39-40页 |
| 2.2.14 基因RCN20和OsTB1的表达量分析 | 第40-41页 |
| 2.2.15 DEX(Dexamethason)处理 | 第41页 |
| 2.2.16 GR24(独脚金内酯类似物)处理 | 第41页 |
| 2.3 结果与分析 | 第41-62页 |
| 2.3.1 突变体表型分析 | 第41-43页 |
| 2.3.2 分蘖芽细胞学观察 | 第43-46页 |
| 2.3.3 突变体的遗传分析 | 第46页 |
| 2.3.4 突变体rcn20的基因图位克隆 | 第46-47页 |
| 2.3.5 同源蛋白序列比对和进化分析 | 第47-50页 |
| 2.3.6 目的基因功能互补验证 | 第50-51页 |
| 2.3.7 基因表达模式分析 | 第51-53页 |
| 2.3.8 构建双突变体验证RCN20位于OsTB1的下游 | 第53-54页 |
| 2.3.9 RCN20与OsTB1在水稻突变体tb1和d14中的表达量分析 | 第54-56页 |
| 2.3.10 OsTB1对RCN20的表达起到抑制作用 | 第56-62页 |
| 2.4 结论与讨论 | 第62-64页 |
| 2.4.1 结论 | 第62页 |
| 2.4.2 讨论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 附录 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 作者简历 | 第72页 |
