| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 缩略说明 | 第11-12页 |
| 一 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 钙对植物的重要性 | 第12-14页 |
| 1.1.1 钙的生理功能 | 第12页 |
| 1.1.2 植物对钙的吸收和运输 | 第12-13页 |
| 1.1.3 植物缺钙的原因及影响 | 第13-14页 |
| 1.2 植物Ca~(2+)信号转导 | 第14-16页 |
| 1.2.1 Ca~(2+)信号的功能 | 第14-15页 |
| 1.2.2 Ca~(2+)信号的生成 | 第15页 |
| 1.2.3 Ca~(2+)信号的解码和传递 | 第15-16页 |
| 1.3 植物中的H_2O_2信号 | 第16-18页 |
| 1.3.1 H_2O_2的产生与清除 | 第16-17页 |
| 1.3.2 H_2O_2信号调控的生理效应 | 第17-18页 |
| 1.4 植物CPKs研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4.1 CPKs的生化性质 | 第18页 |
| 1.4.2 CPKs的分子结构 | 第18-19页 |
| 1.4.3 CPKs在细胞信号转导中的作用 | 第19-20页 |
| 1.5 本研究的目的与意义 | 第20-22页 |
| 二 材料与方法 | 第22-35页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-26页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 2.1.2 菌种及质粒 | 第22页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第23页 |
| 2.1.5 主要溶液与培养基的配制 | 第23-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-35页 |
| 2.2.1 拟南芥的培养 | 第26-27页 |
| 2.2.2 SDS法提取植物DNA | 第27页 |
| 2.2.3 atcpk6突变体的纯合鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2.4 atcpk6突变体的表型分析 | 第28页 |
| 2.2.5 CTAB法提取植物DNA | 第28-29页 |
| 2.2.6 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第29页 |
| 2.2.7 pORER1-AtCPK6Promoter-Gus载体构建 | 第29-31页 |
| 2.2.8 农杆菌感受态的制备 | 第31-32页 |
| 2.2.9 电击法转化农杆菌感受态 | 第32页 |
| 2.2.10 农杆菌侵染拟南芥花序 | 第32页 |
| 2.2.11 阳性植株的筛选 | 第32-33页 |
| 2.2.12 GUS组织化学染色 | 第33页 |
| 2.2.13 拟南芥atcpk6和Col-0中总钙量的测定 | 第33-34页 |
| 2.2.14 DAB染色 | 第34页 |
| 2.2.15 DHR染色 | 第34-35页 |
| 三 结果与分析 | 第35-43页 |
| 3.1 拟南芥CPK6基因缺失纯合突变体的获得 | 第35-36页 |
| 3.2 低Ca~(2+)条件抑制atcpk6突变体生长 | 第36-37页 |
| 3.3 低Ca~(2+)条件能够增强AtCPK6启动子在叶中的活性 | 第37-40页 |
| 3.4 AtCPK6不参与拟南芥Ca的积累 | 第40-41页 |
| 3.5 AtCPK6是介导低Ca~(2+)诱导植物积累H_2O_2的负调控因子 | 第41-43页 |
| 四 结论与讨论 | 第43-45页 |
| 4.1 结论 | 第43页 |
| 4.2 讨论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第55页 |
