| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 缩略说明 | 第10-11页 |
| 一 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 钙在植物中的重要性 | 第11-12页 |
| 1.1.1 植物对钙的吸收和转运 | 第11页 |
| 1.1.2 钙的重要生理功能 | 第11-12页 |
| 1.1.3 钙对植物生长的影响 | 第12页 |
| 1.2 钙是植物体内重要的第二信使 | 第12-15页 |
| 1.2.1 Ca~(2+)转运通道 | 第12-13页 |
| 1.2.2 植物对环境的感知：钙信号编码 | 第13-14页 |
| 1.2.3 植物环境响应中的信号整合：钙信号解码 | 第14页 |
| 1.2.4 Ca~(2+)参与细胞壁和细胞质之间的信号转导 | 第14-15页 |
| 1.3 膜转运蛋白 | 第15-18页 |
| 1.3.1 SEC61复合物结构与功能 | 第15-16页 |
| 1.3.2 前蛋白移位酶,SEC61-β亚基蛋白 | 第16-17页 |
| 1.3.3 植物AtSEC61-β基因编码的蛋白 | 第17-18页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第18-19页 |
| 二 材料与方法 | 第19-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第19页 |
| 2.1.2 菌种与质粒 | 第19页 |
| 2.1.3 实验相关试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-32页 |
| 2.2.1 实验相关试剂的配制 | 第20-23页 |
| 2.2.2 拟南芥的培养 | 第23页 |
| 2.2.3 AtSEC61-β基因缺失突变体的表型鉴定实验 | 第23-24页 |
| 2.2.4 植物总钙、镁含量的提取及测定 | 第24页 |
| 2.2.5 拟南芥总DNA提取方法(CTAB方法) | 第24-25页 |
| 2.2.6 目的片段与克隆载体连接 | 第25页 |
| 2.2.7 制备大肠杆菌感受态 | 第25-26页 |
| 2.2.8 重组质粒转化大肠杆菌 | 第26页 |
| 2.2.9 重组质粒的验证 | 第26-27页 |
| 2.2.10 目的片段与表达载体连接 | 第27页 |
| 2.2.11 烟草瞬时转化方法 | 第27-28页 |
| 2.2.12 GUS染色方法 | 第28-29页 |
| 2.2.13 拟南芥转基因植株的筛选 | 第29-31页 |
| 2.2.14 拟南芥突变体互补材料的得到 | 第31-32页 |
| 2.3 引物列表 | 第32-33页 |
| 2.3.1 克隆引物 | 第32页 |
| 2.3.2 纯合鉴定引物 | 第32-33页 |
| 三 实验结果与分析 | 第33-46页 |
| 3.1 AtSEC61-β基因参与植物钙吸收的机理研究 | 第33-38页 |
| 3.1.1 在低钙条件下atsec61突变体生长受严重抑制 | 第33-36页 |
| 3.1.2 突变体atsec61的表型具有稳定性 | 第36-38页 |
| 3.2 AtSEC61-β基因的缺失导致了植物低钙表型 | 第38-39页 |
| 3.3 原子吸收光谱仪(ICP)检测突变体和Col-0总Ca、Mg含量 | 第39-41页 |
| 3.4 AtSEC61-β基因所编码的蛋白定位在内质网上 | 第41-43页 |
| 3.5 AtSEC61-β基因启动子活性研究 | 第43-46页 |
| 四 结论与讨论 | 第46-48页 |
| 4.1 结论 | 第46页 |
| 4.2 讨论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 附件 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
