| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 英文缩略语 | 第13-18页 |
| 第一部分 ：骨髓间充质干细胞治疗急性肝衰竭大鼠的临床疗效 | 第18-33页 |
| 1 前言 | 第18-20页 |
| 2 材料和方法 | 第20-27页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第20-22页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验细胞 | 第21-22页 |
| 2.1.4 实验动物 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.2.1 相关试剂配制 | 第22页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第22-23页 |
| 2.2.3 更换细胞培养液 | 第23页 |
| 2.2.4 细胞传代 | 第23页 |
| 2.2.5 细胞冻存 | 第23-24页 |
| 2.2.6 细胞计数 | 第24页 |
| 2.2.7 细胞转染 | 第24页 |
| 2.2.8 细胞收集 | 第24-25页 |
| 2.2.9 动物分组及模型建立 | 第25页 |
| 2.2.10 标本采集及制备 | 第25-26页 |
| 2.2.11 HE染色 | 第26-27页 |
| 3 结果 | 第27-30页 |
| 3.1 构建急性肝衰竭大鼠模型 | 第27-28页 |
| 3.2 骨髓间充质干细胞治疗急性肝衰竭的疗效评估 | 第28-30页 |
| 4 讨论 | 第30-32页 |
| 5 结论 | 第32-33页 |
| 第二部分 ：分析巨噬细胞表型极化与肝再生功能的关系 | 第33-53页 |
| 1 前言 | 第33-34页 |
| 2 材料和方法 | 第34-44页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第34-35页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第34页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第34-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-44页 |
| 2.2.1 实时荧光定量PCR(QuantitativeReal-timePCR) | 第35-38页 |
| 2.2.2 流式多因子检测 | 第38-39页 |
| 2.2.3 免疫组化 | 第39-41页 |
| 2.2.4 免疫荧光单染 | 第41-42页 |
| 2.2.5 免疫荧光双染 | 第42-43页 |
| 2.2.6 TUNEL染色 | 第43-44页 |
| 3 结果 | 第44-50页 |
| 3.1 MSCs治疗后肝细胞再生功能的分析 | 第44-46页 |
| 3.2 M1/M2巨噬细胞在急性肝衰竭组的分布 | 第46-47页 |
| 3.3 M2巨噬细胞在MSCs治疗后存活组和死亡组的分布 | 第47-48页 |
| 3.4 M1巨噬细胞在MSCs治疗后存活组和死亡组的分布 | 第48页 |
| 3.5 MSCs治疗后IL-4、IL-10与植入的MSCs共定位的表达 | 第48-50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 第三部分 :探讨骨髓间充质干细胞治疗急性肝衰竭过程中巨噬细胞向M2极化的分子机制 | 第53-73页 |
| 1 前言 | 第53-54页 |
| 2 材料和方法 | 第54-61页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第54-57页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第54-55页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第55-56页 |
| 2.1.3 相关试剂的配制 | 第56-57页 |
| 2.2 研究方法 | 第57-61页 |
| 2.2.1 WesternBlot检测GATA3、STAT6和P-STAT6蛋白表达水平 | 第57-59页 |
| 2.2.2 TMT蛋白质组学检测 | 第59-61页 |
| 3 结果 | 第61-70页 |
| 3.1 MSCs治疗急性肝衰竭后存活组和死亡组差异表达蛋白的鉴定 | 第61-64页 |
| 3.2 MSCs治疗急性肝衰竭后存活组和死亡组差异蛋白GO分析 | 第64-68页 |
| 3.3 MSCs治疗急性肝衰竭后存活组和死亡组差异蛋白KEGG分析 | 第68-69页 |
| 3.4 STAT6、GATA3在治疗存活组和死亡组的表达水平 | 第69-70页 |
| 4 讨论 | 第70-72页 |
| 5 结论 | 第72-73页 |
| 本论文创新性的自我评价 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-79页 |
| 综述 | 第79-93页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 个人简介 | 第95页 |
