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驱动蛋白Kif18A多克隆抗体的制备以及有丝分裂期蛋白翻译后修饰的检测

摘要第5-6页
Abstract第6页
第一章 文献综述与立题依据第9-24页
    1.1 驱动蛋白的发现第9页
    1.2 驱动蛋白家族的分类第9-10页
    1.3 哺乳动物细胞的有丝分裂第10-13页
    1.4 Kifl8A蛋白分子的概述第13-17页
        1.4.1 人驱动蛋白Kifl8A第13-14页
        1.4.2 Kifl8A分子的cDNA序列与编码氨基酸序列第14-17页
    1.5 Kifl8A蛋白在有丝分裂过程中的功能第17-20页
        1.5.1 Kifl8A蛋白在细胞周期内的表达与定位第17-18页
        1.5.2 Kifl8A的微管蛋白亲和性和微管解聚酶功能第18页
        1.5.3 Kifl8A对于纺锤体形态的调节作用第18-19页
        1.5.4 Kifl8A对于有丝分裂中期染色体的排列有重要的调节作用第19-20页
    1.6 课题设立的背景及依据第20-24页
        1.6.1 细胞有丝分裂是保证细胞遗传物质稳定的必要条件第20-21页
        1.6.2 驱动蛋白分子Kifl8A与有丝分裂过程中姐妹染色体中板集合密切相关第21页
        1.6.3 驱动蛋白分子Kifl8A在细胞有丝分裂过程中的定位与功能发生变化第21-22页
        1.6.4 驱动蛋白分子Kifl8A在细胞有丝分裂过程中亚细胞结构定位发生改变第22-23页
        1.6.5 驱动蛋白分子Kifl8A与临床肿瘤发生有潜在关联第23-24页
第二章 材料与方法第24-44页
    2.1 实验材料与实验仪器第24-25页
        2.1.1 细胞与细菌第24页
        2.1.2 主要实验仪器第24-25页
    2.2 实验试剂第25-33页
        2.2.1 实验药品第25-26页
        2.2.2 培养基第26页
        2.2.3 缓冲溶液第26-28页
        2.2.4 电泳缓冲液、上样缓冲液与WB(Western Blot)转膜缓冲液第28-29页
        2.2.5 细胞固定液与免疫杂交封闭液第29-30页
        2.2.6 考马斯亮蓝染色液与脱色液第30页
        2.2.7 细胞裂解液与细菌裂解液第30-33页
        2.2.8 ECL发光试剂第33页
    2.3 实验方法第33-44页
        2.3.1 HeLa细胞的培养与传代第34-35页
        2.3.2 细菌的培养与诱导蛋白表达第35-36页
        2.3.3 细菌质粒大提第36-37页
        2.3.4 分子克隆第37-38页
        2.3.5 蛋白的纯化与抗原制备第38-41页
        2.3.6 免疫共沉淀(Co-IP)实验与蛋白免疫印迹(Western Blot)第41-43页
        2.3.7 免疫荧光染色第43-44页
第三章 实验与结果第44-56页
    3.1 实验技术路线图第44-45页
    3.2 实验结果第45-56页
        3.2.1 GST-Kifl8A-C297与His-Kifl8A-C297原核表达质粒的构建第45-46页
        3.2.2 GST-Kifl8A-C297抗原蛋白的纯化第46页
        3.2.3 His-KC297蛋白与Ni树脂凝胶的交联第46-47页
        3.2.4 抗原的免疫与抗体纯化第47页
        3.2.5 抗体血清与纯化抗体的检测第47-48页
        3.2.6 内源性Kifl8A蛋白的翻译后修饰的预测第48-50页
        3.2.7 驱动蛋白Kifl8A的翻译后蛋白修饰位点的检测第50-56页
第四章 讨论第56-75页
    4.1 实验过程讨论第56-74页
        4.1.1 抗原免疫过程的讨论第57-62页
        4.1.2 抗体纯化与检测的讨论第62-63页
        4.1.3 Kifl8A蛋白定位的研究第63-70页
        4.1.4 蛋白质谱分析的讨论第70-74页
    4.2 后期实验规划第74-75页
参考文献第75-84页

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