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嗜热水解酶催化不对称加成反应的研究

摘要第4-6页
abstract第6-7页
第一章 前言第13-34页
    1.1 酶的非特异性催化第13-14页
    1.2 酶非特异性催化的产生第14-17页
        1.2.1 趋异进化产生的非特异性催化第15页
        1.2.2 人工修饰酶非特异性催化的产生第15-17页
    1.3 酶的非特异性催化在有机合成中的应用第17-20页
        1.3.1 脂肪酶的非特异性催化在有机合成反应中的应用第18-19页
        1.3.2 蛋白酶的非特异性催化在有机合成反应中的应用第19-20页
        1.3.3 酯酶的非特异性催化在有机合成反应中的应用第20页
    1.4 酶非特异性催化的几种主要反应类型第20-25页
        1.4.1 Aldol加成反应第21-22页
        1.4.2 Micheal加成反应第22-23页
        1.4.3 Knoevenagel缩合反应第23-25页
        1.4.4 Baylis-Hillman加成反应第25页
    1.5 非水介质中酶的非特异性催化第25页
    1.6 α/β 水解酶的非特异性催化第25-26页
    1.7 水解酶催化的立体以及对映体选择性第26-28页
        1.7.1 机械拆分法第27页
        1.7.2 晶体接种拆分法第27页
        1.7.3 化学拆分法第27页
        1.7.4 色谱拆分法第27页
        1.7.5 酶促拆分法第27-28页
    1.8 影响酶非特异性催化反应的因素第28-30页
        1.8.1 有机溶剂对酶催化反应的影响第28-29页
        1.8.2 温度对酶催化反应的影响第29页
        1.8.3 水分含量对酶催化反应的影响第29-30页
    1.9 酶的非特异性催化Henry加成反应第30-33页
        1.9.1 化学合成法的局限性第31-32页
        1.9.2 酶的非特异性催化Henry加成反应第32-33页
    1.10 本文的研究思路及主要内容第33-34页
第二章 多种来源的酶催化的C-C加成反应的研究第34-42页
    2.1 引言第34页
    2.2 材料和方法第34-36页
        2.2.1 实验仪器与材料第34-35页
        2.2.2 酶催化Aldol加成反应第35页
        2.2.3 酶催化Henry加成反应第35-36页
        2.2.4 反应产物的分离与鉴定第36页
    2.3 实验结果与讨论第36-41页
        2.3.1 合成化合物的表征第36-38页
        2.3.2 多种酶催化的Aldol加成反应第38-40页
        2.3.3 多种酶催化的Henry加成反应第40-41页
    2.4 本章小结第41-42页
第三章 Tnap0664催化Aldol反应的条件优化第42-47页
    3.1 引言第42页
    3.2 材料和方法第42-43页
        3.2.1 实验仪器与材料第42页
        3.2.2 酶催化Aldol加成反应第42-43页
    3.3 实验结果与讨论第43-45页
        3.3.1 温度对酶催化Aldol加成反应的影响第43页
        3.3.2 水含量对酶催化Aldol加成反应的影响第43-44页
        3.3.3 反应时间对酶催化Aldol加成反应的影响第44-45页
        3.3.4 Tnap0664催化Aldol加成反应的动力学参数的测定第45页
    3.4 本章小结第45-47页
第四章 ST0779催化Henry加成反应条件的优化第47-56页
    4.1 引言第47页
    4.2 材料和方法第47-49页
        4.2.1 实验仪器与材料第47页
        4.2.2 实验方法第47-49页
    4.3 实验结果与讨论第49-55页
        4.3.1 不同有机溶剂对酶催化Henry加成反应的影响第49-50页
        4.3.2 不同温度对酶催化Henry加成反应的影响第50-51页
        4.3.3 水含量对酶催化Henry加成反应的影响第51-52页
        4.3.4 底物摩尔比对酶催化Henry加成反应的影响第52-53页
        4.3.5 反应时间对酶催化Henry加成反应的影响第53-54页
        4.3.6 反应动力学参数的测定第54-55页
    4.4 本章小结第55-56页
第五章 ST0779催化多样性的研究第56-63页
    5.1 引言第56页
    5.2 材料和方法第56-57页
        5.2.1 实验仪器与材料第56页
        5.2.2 实验方法第56-57页
    5.3 实验结果与讨论第57-62页
        5.3.1 不同取代基团对酶非特异性催化Henry反应的影响第57-60页
        5.3.2 表观速率常数的测定第60-61页
        5.3.3 哈米特方程第61-62页
    5.4 本章小结第62-63页
第六章 嗜热酰基氨肽酶ST0779突变体的构建及表达第63-75页
    6.1 引言第63页
    6.2 实验仪器与材料第63-64页
        6.2.1 实验仪器第63页
        6.2.2 实验材料第63-64页
    6.3 实验方法第64-67页
        6.3.1 引物设计第64-65页
        6.3.2 全质粒PCR第65-66页
        6.3.3 突变重组质粒的转化及鉴定第66页
        6.3.4 目的蛋白的诱导表达第66-67页
        6.3.5 目的蛋白的纯化第67页
    6.4 结果与讨论第67-74页
        6.4.1 突变体S439A,D523A,H555A,R525E及R525V的全质粒PCR第67-68页
        6.4.2 全质粒PCR产物的DpnⅠ消化,转化及质粒提取第68-69页
        6.4.3 突变重组质粒的测序第69-71页
        6.4.4 目的蛋白的诱导表达第71-73页
        6.4.5 目的蛋白的纯化第73-74页
    6.5 小结第74-75页
第七章 ST0779突变体的催化性质研究第75-82页
    7.1 引言第75页
    7.2 材料和方法第75-76页
        7.2.1 实验仪器与材料第75页
        7.2.2 肽酶活力测定第75-76页
        7.2.3 酯酶活力测定第76页
        7.2.4 ST0779突变体催化Henry加成反应第76页
        7.2.5 Henry加成反应产物的分离与鉴定第76页
    7.3 实验结果与讨论第76-81页
        7.3.1 合成化合物的表征第76-77页
        7.3.2 ST0779突变体肽酶和酯酶活力的测定第77-78页
        7.3.3 ST0779突变体催化Henry加成反应第78-81页
    7.4 本章小结第81-82页
结论第82-84页
参考文献第84-98页
附录第98-112页
作者简介及科研成果第112-113页
致谢第113页

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