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阪崎肠杆菌免疫磁性富集及快速检测方法研究

摘要第5-8页
Abstract第8-11页
0 前言第24-58页
    0.1 阪崎肠杆菌的富集及检测研究进展第24-29页
        0.1.1 阪崎肠杆菌污染现状第24页
        0.1.2 阪崎肠杆菌的抗性第24-25页
        0.1.3 食品中阪崎肠杆菌的检测技术第25-29页
            0.1.3.1 传统检测方法第25页
            0.1.3.2 分离培养基的改进第25页
            0.1.3.3 分子生物学检测方法第25-27页
                0.1.3.3.1 单重PCR技术第25页
                0.1.3.3.2多重PCR技术第25-26页
                0.1.3.3.3 实时荧光定量PCR技术第26页
                0.1.3.3.4 环介导等温扩增技术第26-27页
            0.1.3.4 免疫学检测方法第27-29页
                0.1.3.4.1 酶联免疫酶联免疫吸附试验第27页
                0.1.3.4.2 乳胶凝集实验第27-28页
                0.1.3.4.3 免疫胶体金技术第28页
                0.1.3.4.4 免疫磁性微球富集技术(Immunomagnetic beads technology,IMB)第28页
                0.1.3.4.5 免疫荧光技术第28-29页
                0.1.3.4.6 免疫印迹技术第29页
                0.1.3.4.7 免疫检测技术的改进第29页
    0.2 磁性微球的制备第29-32页
        0.2.1 磁性微球简介第29-30页
        0.2.2 磁性微球的制备方法第30-31页
            0.2.2.1 包埋法第30页
            0.2.2.2 悬浮聚合法第30页
            0.2.2.3 分散聚合法第30页
            0.2.2.4 乳液聚合法第30页
            0.2.2.5 反相乳液聚合法第30页
            0.2.2.6 化学转化法第30-31页
        0.2.3 磁性微球的表面改性第31-32页
            0.2.3.1 单体共聚反应第31页
            0.2.3.2 表面改性处理第31-32页
            0.2.3.3 功能单体壳聚糖简介第32页
    0.3 免疫荧光探针的制备第32-37页
        0.3.1 量子点的制备及应用第32-34页
            0.3.1.1 量子点简介第32-33页
            0.3.1.2 量子点的合成方法第33-34页
                0.3.1.2.1 量子点的有机相合成第33页
                0.3.1.2.2 量子点的水相合成第33-34页
                0.3.1.2.3 水相量子点的包壳合成第34页
        0.3.2 免疫荧光技术第34-35页
            0.3.2.1 免疫荧光技术原理第34页
            0.3.2.2 荧光染料第34-35页
                0.3.2.2.1 有机小分子染料第34-35页
                0.3.2.2.2 稀土配合物第35页
                0.3.2.2.3 半导体量子点第35页
        0.3.3 荧光染料与生物分子的偶联第35-37页
            0.3.3.1 有机小分子染料与生物分子的偶联第35-36页
            0.3.3.2 稀土配合物与生物分子的偶联第36页
            0.3.3.3 量子点与生物分子的偶联第36-37页
    0.4 免疫抗血清的制备第37-38页
        0.4.1 抗体概述第37-38页
        0.4.2 多克隆抗体的制备第38页
    0.5 立题依据第38-39页
    0.6 研究内容及研究意义第39-43页
        0.6.1 研究内容及技术路线第39-42页
            0.6.1.1 研究内容第39-42页
            0.6.1.2 技术路线第42页
        0.6.2 研究意义第42-43页
    参考文献第43-58页
1 阪崎肠杆菌多克隆抗体的制备第58-74页
    1.1 试剂与仪器第58-60页
        1.1.1 试剂第58-60页
        1.1.2 仪器第60页
    1.2 方法与步骤第60-64页
        1.2.1 抗原制备第60页
        1.2.2 抗血清制备第60-61页
        1.2.3 抗血清的纯化第61页
        1.2.4 抗血清效价的测定第61-62页
            1.2.4.1 玻片凝集法第61-62页
            1.2.4.2 间接ELISA法第62页
        1.2.5 纯化后多抗浓度测定第62-63页
        1.2.6 纯化后多克隆抗体的纯度分析第63页
        1.2.7 Western-blotting检测第63页
        1.2.8 MSMALDI-TOF/TOF-MS分析第63-64页
        1.2.9 IFAT检测第64页
    1.3 结果与讨论第64-71页
        1.3.1 阪崎肠杆菌多克隆抗体的纯化结果第64-66页
        1.3.2 纯化后多克隆抗体的效价第66-67页
        1.3.3 多克隆抗体浓度的测定结果第67页
        1.3.4 多克隆抗体的West-blotting分析结果第67-69页
        1.3.5 MSMALDI-TOF/TOF-MS鉴定结果第69-70页
        1.3.6 多克隆抗体的IFAT检测结果第70-71页
    1.4 本章小结第71页
    参考文献第71-74页
2 磁性壳聚糖微球的制备及表征第74-85页
    2.1 试剂与仪器第74-75页
        2.1.1 试剂第74页
        2.1.2 仪器第74-75页
    2.2 方法与步骤第75-77页
        2.2.1 水基磁流体的制备第75页
        2.2.2 磁性壳聚糖微球的制备第75-76页
        2.2.3 水基磁流体和磁性壳聚糖微球的基本性质第76-77页
            2.2.3.1 水基磁性流体的绝对质量与磁响应性第76页
            2.2.3.2 Fe_3O_4纳米粒子的磁滞回曲线第76页
            2.2.3.3 磁性壳聚糖微球的磁性响应性与磁滞回曲线第76页
            2.2.3.4 磁性壳聚糖微球的SEM分析第76页
            2.2.3.5 XRD分析第76页
            2.2.3.6 FTIR分析第76页
            2.2.3.7 DSC分析第76-77页
    2.3 结果与讨论第77-83页
        2.3.1 水基磁性流体的绝对质量与磁响应性第77页
        2.3.2 Fe_3O_4纳米粒子的磁滞回曲线第77-78页
        2.3.3 磁性壳聚糖微球的磁性响应性与磁滞回曲线第78-79页
        2.3.4 磁性壳聚糖微球的SEM分析结果第79页
        2.3.5 XRD分析结果第79-80页
        2.3.6 FTIR分析结果第80-81页
        2.3.7 DSC分析结果第81-83页
    2.4 本章小结第83页
    参考文献第83-85页
3 磁性壳聚糖微球的表面羧基化及对阪崎肠杆菌的富集作用研究第85-106页
    3.1 试剂与仪器第85-86页
        3.1.1 试剂第85-86页
        3.1.2 仪器第86页
    3.2 方法与步骤第86-91页
        3.2.1 磁性壳聚糖微球的表面羧基化第86-87页
        3.2.2 表面羧基化磁性壳聚糖微球的表征第87页
            3.2.2.1 XRD分析第87页
            3.2.2.2 FTIR分析第87页
            3.2.2.3 DSC分析第87页
        3.2.3 羧基化磁性壳聚糖微球与阪崎肠杆菌多克隆抗体的偶联第87-88页
            3.2.3.1 偶联步骤第87页
            3.2.3.2 偶联时间对偶联效果的影响第87页
            3.2.3.3 微球用量对偶联效果的影响第87-88页
            3.2.3.4 活化缓冲液pH对偶联效果的影响第88页
            3.2.3.5 微球对抗体饱和偶联量的测定第88页
        3.2.4 免疫磁性微球对阪崎肠杆菌的富集效果第88-89页
            3.2.4.1 测定步骤第88-89页
            3.2.4.2 免疫磁性微球用量对富集效果的影响第89页
            3.2.4.3 温度对富集效果的影响第89页
            3.2.4.4 时间对富集效果的影响第89页
            3.2.4.5 pH对富集效果的影响第89页
        3.2.5 SEM分析第89页
        3.2.6 灵敏度实验第89-90页
        3.2.7 特异性实验第90页
        3.2.8 免疫磁性壳聚糖微球的重复利用第90-91页
            3.2.8.1 洗脱时间对重复利用效果的影响第90页
            3.2.8.2 洗脱液pH对重复利用效果的影响第90-91页
            3.2.8.3 免疫磁性微球的重复利用效果第91页
    3.3 结果与讨论第91-103页
        3.3.1 表面羧基化磁性壳聚糖微球的表征结果第91-93页
            3.3.1.1 XRD分析结果第91页
            3.3.1.2 FTIR分析结果第91-92页
            3.3.1.3 DSC分析结果第92-93页
        3.3.2 磁性壳聚糖微球与阪崎肠杆菌多克隆抗体的偶联第93-95页
            3.3.2.1 偶联时间对偶联效果的影响第93页
            3.3.2.2 微球用量对偶联效果的影响第93-94页
            3.3.2.3 活化缓冲液pH对偶联效果的影响第94-95页
            3.3.2.4 微球对抗体饱和偶联量第95页
        3.3.3 免疫磁性微球对阪崎肠杆菌的富集效果第95-100页
            3.3.3.1 免疫磁性微球用量对富集效果的影响第95-96页
            3.3.3.2 温度对富集效果的影响第96页
            3.3.3.3 时间对富集效果的影响第96-97页
            3.3.3.4 pH对富集效果的影响第97-98页
            3.3.3.5 磁性壳聚糖微球及捕获阪崎肠杆菌后的SEM分析结果第98-99页
            3.3.3.6 灵敏度实验结果第99页
            3.3.3.7 特异性实验结果第99-100页
        3.3.4 磁性壳聚糖微球的表面羧基化及与抗体的偶联机理第100-101页
        3.3.5 免疫磁性微球的重复利用第101-103页
            3.3.5.1 洗脱时间对重复利用的影响第101页
            3.3.5.2 洗脱液pH对重复利用的影响第101-102页
            3.3.5.3 免疫磁性微球的重复利用效果第102-103页
    3.4 本章小结第103页
    参考文献第103-106页
4 磁性壳聚糖微球的表面氨基化及对阪崎肠杆菌的富集作用研究第106-126页
    4.1 试剂与仪器第106-107页
        4.1.1 试剂第106-107页
        4.1.2 仪器第107页
    4.2 方法与步骤第107-111页
        4.2.1 磁性壳聚糖微球的表面氨基化第107页
        4.2.2 表面氨基化磁性壳聚糖微球的表征第107-108页
            4.2.2.1 XRD分析第107-108页
            4.2.2.2 FTIR分析第108页
            4.2.2.3 DSC分析第108页
        4.2.3 表面氨基化磁性壳聚糖微球与阪崎肠杆菌多克隆抗体的偶联第108-109页
            4.2.3.1 偶联步骤第108页
            4.2.3.2 偶联时间对偶联效果的影响第108页
            4.2.3.3 微球用量对偶联效果的影响第108页
            4.2.3.4 偶联体系pH对偶联效果的影响第108-109页
            4.2.3.5 微球对抗体饱和偶联量的测定第109页
        4.2.4 免疫磁性壳聚糖微球对阪崎肠杆菌的富集效果第109-111页
            4.2.4.1 测定步骤第109页
            4.2.4.2 免疫磁性壳聚糖微球用量对富集效果的影响第109页
            4.2.4.3 温度对富集效果的影响第109-110页
            4.2.4.4 时间对富集效果的影响第110页
            4.2.4.5 pH对富集效果的影响第110页
            4.2.4.6 免疫磁性微球对阪崎肠杆菌捕获的SEM分析第110页
            4.2.4.7 灵敏度实验第110页
            4.2.4.8 特异性实验第110-111页
        4.2.5 免疫磁性微球的重复利用第111页
            4.2.5.1 洗脱时间对重复利用的影响第111页
            4.2.5.2 洗脱液pH对重复利用的影响第111页
            4.2.5.3 免疫磁性微球的重复利用效果第111页
    4.3 结果与讨论第111-124页
        4.3.1 表面氨基化磁性壳聚糖微球的表征结果第111-113页
            4.3.1.1 XRD分析结果第111-112页
            4.3.1.2 FTIR分析结果第112-113页
            4.3.1.3 DSC分析结果第113页
        4.3.2 磁性壳聚糖微球与阪崎肠杆菌多克隆抗体的偶联第113-116页
            4.3.2.1 偶联时间对偶联效果的影响第113-114页
            4.3.2.2 微球用量对偶联效果的影响第114-115页
            4.3.2.3 偶联体系pH对偶联效果的影响第115页
            4.3.2.4 微球对抗体的饱和偶联量第115-116页
        4.3.3 免疫磁性微球对阪崎肠杆菌的富集效果第116-121页
            4.3.3.1 微球用量对富集效果的影响第116-117页
            4.3.3.2 温度对富集效果的影响第117页
            4.3.3.3 时间对富集效果的影响第117-118页
            4.3.3.4 pH对富集效果的影响第118-119页
            4.3.3.5 磁性壳聚糖微球及捕获阪崎肠杆菌后的SEM分析结果第119-120页
            4.3.3.6 灵敏度实验结果第120页
            4.3.3.7 特异性实验结果第120-121页
        4.3.4 磁性壳聚糖微球的表面氨基化及与抗体的偶联机理第121-122页
        4.3.5 免疫磁性壳聚糖微球的重复利用第122-124页
            4.3.5.1 洗脱时间对重复利用的影响第122-123页
            4.3.5.2 洗脱液pH对重复利用的影响第123页
            4.3.5.3 免疫磁性微球的重复利用效果第123-124页
    4.4 本章小结第124页
    参考文献第124-126页
5 超声波辅助盐水浴高效制备核壳结构CdTe/CdS量子点的研究第126-144页
    5.1 试剂与仪器第127-128页
        5.1.1 材料与试剂第127页
        5.1.2 仪器与设备第127-128页
    5.2 方法与步骤第128页
        5.2.1 超声波辅助盐水浴高效制备核壳结构CdTe/CdS量子点第128页
        5.2.2 CdTe/CdS量子点的表征第128页
    5.3 结果与讨论第128-139页
        5.3.1 不同回流温度量子点的紫外-可见吸收光谱第128-129页
        5.3.2 不同回流温度量子点的PLQY第129-130页
        5.3.3 不同回流时间量子点的紫外第130页
        5.3.4 量子点的激发光谱第130-131页
        5.3.5 量子点的荧光发射光谱第131-132页
        5.3.6 量子点的激发光谱与荧光发射光谱比较第132页
        5.3.7 量子点的荧光照片第132-134页
        5.3.8 量子点的TEM分析和激光粒度分析结果第134-135页
        5.3.9 量子点的XRD分析结果第135-136页
        5.3.10 量子点的FTIR分析结果第136页
        5.3.11 量子点的EDS分析结果第136-138页
        5.3.12 CdTe/CdS量子点的合成机理第138-139页
        5.3.13 CdTe/CdS量子点的荧光寿命与荧光稳定性第139页
    5.4 本章小结第139-140页
    参考文献第140-144页
6 阪崎肠杆菌免疫荧光探针的制备及对阪崎肠杆菌的荧光标记第144-158页
    6.1 仪器与试剂第144-145页
        6.1.1 材料与试剂第144-145页
        6.1.2 仪器与设备第145页
    6.2 方法与步骤第145-147页
        6.2.1 免疫荧光探针的制备第145-147页
            6.2.1.1 制备步骤第145页
            6.2.1.2 CdTe/CdS量子点用量对免疫荧光探针荧光强度的影响第145-146页
            6.2.1.3 温度对免疫荧光探针荧光强度的影响第146页
            6.2.1.4 时间对免疫荧光探针荧光强度的影响第146页
            6.2.1.5 pH对免疫荧光探针荧光强度的影响第146页
            6.2.1.6 抗体用量对免疫荧光探针荧光强度的影响第146-147页
        6.2.2 免疫荧光探针的表征第147页
        6.2.3 免疫荧光探针对阪崎肠杆菌的荧光标记第147页
    6.3 结果与讨论第147-155页
        6.3.1 免疫荧光探针的制备第147-150页
            6.3.1.1 CdTe/CdS量子点用量对免疫荧光探针荧光强度的影响第147-148页
            6.3.1.2 温度对免疫荧光探针荧光强度的影响第148页
            6.3.1.3 时间对免疫荧光探针荧光强度的影响第148-149页
            6.3.1.4 pH对免疫荧光探针荧光强度的影响第149-150页
            6.3.1.5 抗体用量对免疫荧光探针荧光强度的影响第150页
        6.3.2 免疫荧光探针的表征第150-155页
            6.3.2.1 紫外光谱分析结果第150-151页
            6.3.2.2 荧光光谱分析结果第151-152页
            6.3.2.3 荧光寿命第152页
            6.3.2.4 SDS-PAGE分析结果第152-153页
            6.3.2.5 FTIR分析结果第153-155页
        6.3.3 免疫荧光探针对阪崎肠杆菌的荧光标记结果第155页
    6.4 本章小结第155-156页
    参考文献第156-158页
7 免疫磁性微球及免疫荧光探针对牛奶中阪崎肠杆菌的富集和检测第158-168页
    7.1 仪器与试剂第159-160页
        7.1.1 材料与试剂第159页
        7.1.2 仪器与设备第159-160页
    7.2 方法与步骤第160-161页
        7.2.1 检测步骤第160页
        7.2.2 最佳检测时间研究第160页
        7.2.3 特异性研究第160页
        7.2.4 检出限研究第160-161页
        7.2.5 精密度研究第161页
        7.2.6 稳定性研究第161页
    7.3 结果与讨论第161-165页
        7.3.1 最佳检测时间研究结果第161-162页
            7.3.1.1 富集时间对富集效果的影响第161-162页
            7.3.1.2 荧光标记时间对荧光强度的影响第162页
        7.3.2 特异性研究结果第162-164页
        7.3.3 检出限研究结果第164页
        7.3.4 精密度研究结果第164-165页
        7.3.5 稳定性研究结果第165页
    7.4 本章小结第165-166页
    参考文献第166-168页
论文结论第168-170页
论文创新点第170-171页
研究展望第171-172页
个人简介第172-173页
攻读学位期间发表的学术论文第173-174页
致谢第174页

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