| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 1 研究背景 | 第12-52页 |
| 1.1 天然免疫 | 第12-13页 |
| 1.2 病毒 | 第13-16页 |
| 1.3 抗病毒天然免疫 | 第16-49页 |
| 1.3.1 天然免疫系统对病毒的识别 | 第16-26页 |
| 1.3.2 病毒诱导的信号通路 | 第26-34页 |
| 1.3.3 转录因子 | 第34-37页 |
| 1.3.4 天然免疫中的细胞因子 | 第37-44页 |
| 1.3.5 Ⅰ型干扰素 | 第44-45页 |
| 1.3.6 抗病毒天然免疫信号通路的调节机制 | 第45-49页 |
| 1.4 IFITM家族蛋白 | 第49-52页 |
| 2 研究工作 | 第52-83页 |
| 2.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 2.1.1 双荧光报告基因检测系统 | 第52页 |
| 2.1.2 表达克隆载体 | 第52页 |
| 2.1.3 细胞与细胞培养 | 第52页 |
| 2.1.4 细胞因子、核酸类似物及病毒 | 第52-53页 |
| 2.1.5 Western Blot、免疫共沉淀和免疫荧光实验相关材料 | 第53页 |
| 2.1.6 实时荧光定量PCR相关材料 | 第53页 |
| 2.1.7 其他试剂或耗材 | 第53页 |
| 2.2 实验方法 | 第53-60页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第53-54页 |
| 2.2.2 细胞转染 | 第54页 |
| 2.2.3 逆转录病毒感染建立稳定表达细胞系 | 第54-55页 |
| 2.2.4 构建真核表达载体及原核生物表达载体 | 第55页 |
| 2.2.5 提取质粒 | 第55-56页 |
| 2.2.6 荧光素酶报告基因实验 | 第56页 |
| 2.2.7 制备抗体 | 第56页 |
| 2.2.8 免疫共沉淀实验 | 第56-57页 |
| 2.2.9 细胞核质分离实验 | 第57页 |
| 2.2.10 免疫印迹实验(Western Blot) | 第57-58页 |
| 2.2.11 免疫荧光共聚焦显微观察实验 | 第58页 |
| 2.2.12 实时荧光定量PCR | 第58-59页 |
| 2.2.13 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第59页 |
| 2.2.14 病毒复制情况检测 | 第59-60页 |
| 2.2.15 ELISA检测细胞培养基中IFNβ的含量 | 第60页 |
| 2.2.16 体外结合实验 | 第60页 |
| 2.3 相关溶液及试剂配方 | 第60-61页 |
| 2.4 研究依据 | 第61-62页 |
| 2.5 实验结果 | 第62-80页 |
| 2.5.1 IFITM3抑制RLRs介导的ISRE的激活和IFNB1基因的转录 | 第62-66页 |
| 2.5.2 IFITM3表达的下调促进RLRs介导的信号通路 | 第66-69页 |
| 2.5.3 IFITM3在IRF3水平调控RLRs介导的Ⅰ型干扰素的产生 | 第69-70页 |
| 2.5.4 IFITM3下调IRF3蛋白水平的表达 | 第70-73页 |
| 2.5.5 IFITM3与IRF3存在相互作用 | 第73-76页 |
| 2.5.6 IFITM3通过自噬途径介导IRF3的降解 | 第76-80页 |
| 2.6 研究总结与展望 | 第80-83页 |
| 参考文献 | 第83-95页 |
| 缩略词表 | 第95-98页 |
| 作者简介 | 第98-99页 |
| 攻博期间发表的科研论文 | 第99-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
