| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第14-55页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 微纳通道的种类 | 第14-18页 |
| 1.2.1 生物纳米通道 | 第14-15页 |
| 1.2.2 固态纳米通道 | 第15-17页 |
| 1.2.3 固态纳米通道阵列 | 第17-18页 |
| 1.2.4 微流控通道 | 第18页 |
| 1.3 微纳通道的制备 | 第18-22页 |
| 1.3.1 生物纳米通道 | 第19页 |
| 1.3.2 固态纳米通道 | 第19-21页 |
| 1.3.3 固态纳米通道阵列 | 第21-22页 |
| 1.3.4 微流控通道 | 第22页 |
| 1.4 微纳通道在电化学生物分析中的应用和发展 | 第22-35页 |
| 1.4.1 生物纳米通道 | 第22-25页 |
| 1.4.2 固态纳米通道 | 第25-32页 |
| 1.4.3 固态纳米通道阵列 | 第32-34页 |
| 1.4.4 微流控通道 | 第34-35页 |
| 1.5 本论文的主要研究内容 | 第35-36页 |
| 1.6 参考文献 | 第36-55页 |
| 第二章 葡萄糖氧化酶在纳米通道内的酶催化反应研究 | 第55-73页 |
| 2.1 引言 | 第55-56页 |
| 2.2 实验部分 | 第56-58页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第56页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第56-57页 |
| 2.2.3 PAA纳米通道修饰葡萄糖氧化酶 | 第57页 |
| 2.2.4 电化学测试 | 第57-58页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第58-67页 |
| 2.3.1 葡萄糖氧化酶在PAA纳米通道内的共价固定 | 第58-60页 |
| 2.3.2 葡萄糖氧化酶在纳米通道内的酶催化反应 | 第60-62页 |
| 2.3.3 葡萄糖氧化酶在纳米通道内的酶催化反应动力学 | 第62页 |
| 2.3.4 离子强度对GOD@PAA内酶催化反应动力学的影响 | 第62-64页 |
| 2.3.5 葡萄糖氧化酶固定量对GOD@PAA内酶催化反应动力学的影响 | 第64-65页 |
| 2.3.6 纳米通道孔径对GOD@PAA内酶催化反应动力学的影响 | 第65-67页 |
| 2.4 本章小结 | 第67页 |
| 2.5 参考文献 | 第67-73页 |
| 第三章 定量评估受限纳米空间内的免疫反应动力学 | 第73-94页 |
| 3.1 引言 | 第73-74页 |
| 3.2 实验部分 | 第74-77页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第74-75页 |
| 3.2.2 DNA共价结合到PAA纳米通道内 | 第75页 |
| 3.2.3 PAA/DNA的免疫测试及其再生 | 第75-76页 |
| 3.2.4 电化学测试 | 第76-77页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第77-89页 |
| 3.3.1 基本原理验证 | 第77-78页 |
| 3.3.2 实验条件优化 | 第78-83页 |
| 3.3.3 实时监测免疫反应 | 第83-84页 |
| 3.3.4 模型的建立 | 第84-86页 |
| 3.3.5 模型的应用 | 第86-89页 |
| 3.4 本章小结 | 第89页 |
| 3.5 参考文献 | 第89-94页 |
| 第四章 基于纳米通道定量检测钾离子和三磷酸腺苷的电化学平台 | 第94-115页 |
| 4.1 引言 | 第94-96页 |
| 4.2 实验部分 | 第96-99页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第96-97页 |
| 4.2.2 DNA适体共价结合到PAA纳米通道内 | 第97页 |
| 4.2.3 DNA适体在纳米通道内的构象转换以及该电化学纳米生物分析器件的再生 | 第97-98页 |
| 4.2.4 电化学测试 | 第98-99页 |
| 4.2.5 圆二色光谱(CD)测试 | 第99页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第99-110页 |
| 4.3.1 DNA适体在溶液中的构象转换 | 第99-101页 |
| 4.3.2 DNA适体在纳米通道中的构象转换 | 第101-102页 |
| 4.3.3 电化学检测DNA适体的目标物 | 第102-104页 |
| 4.3.4 纳米通道的孔径、溶液的离子强度和pH对本电化学纳米生物分析器件的影响 | 第104-107页 |
| 4.3.5 本电化学纳米生物分析器件的重现性、使用寿命及特异性 | 第107-110页 |
| 4.4 本章小结 | 第110页 |
| 4.5 参考文献 | 第110-115页 |
| 第五章 水合蛋白质膜的原位分子成像 | 第115-133页 |
| 5.1 引言 | 第115-116页 |
| 5.2 实验部分 | 第116-117页 |
| 5.2.1 SALVI装置的制造 | 第116页 |
| 5.2.2 水合蛋白质膜在氮化硅膜上的附着 | 第116-117页 |
| 5.2.3 ToF-SIMS测试 | 第117页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第117-128页 |
| 5.3.1 水合蛋白质膜的二次离子质谱 | 第117-124页 |
| 5.3.2 水合蛋白质膜的主成分分析(PCA) | 第124-128页 |
| 5.3.3 水合蛋白质膜二次离子的三维(3D)分布 | 第128页 |
| 5.4 本章小结 | 第128-129页 |
| 5.5 参考文献 | 第129-133页 |
| 第六章 电极-电解液界面上电化学反应的实时分子成像 | 第133-146页 |
| 6.1 引言 | 第133-134页 |
| 6.2 实验部分 | 第134-135页 |
| 6.2.1 SALVI电化学装置的制造 | 第134-135页 |
| 6.2.2 ToF-SIMS与电化学联用测试 | 第135页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第135-143页 |
| 6.3.1 电极-电解液界面上电化学反应实时分子成像的原理 | 第135-136页 |
| 6.3.2 恒定电位模式下电极-电解液界面上电化学反应的实时分子成像 | 第136-138页 |
| 6.3.3 循环伏安模式下电极-电解液界面上电化学反应的实时分子成像 | 第138-141页 |
| 6.3.4 电极-电解液界面上电化学反应的二次离子三维(3D)分布 | 第141-143页 |
| 6.4 本章小结 | 第143页 |
| 6.5 参考文献 | 第143-146页 |
| 第七章 总结与展望 | 第146-148页 |
| 7.1 总结 | 第146-147页 |
| 7.2 展望 | 第147-148页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第148-151页 |
| 致谢 | 第151页 |
