| 中文摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-16页 |
| 1．1 天冬氨酸转氨酶及其应用 | 第9-11页 |
| 1．1．1 天冬氨酸转氨酶简介 | 第9页 |
| 1．1．2 苯丙酮酸转氨酶法生产L-Phe | 第9-10页 |
| 1．1．3 苯丙酮酸转氨酶法的研究现状 | 第10-11页 |
| 1．2 双水相萃取分离技术 | 第11-15页 |
| 1．2．1 双水相体系简介 | 第11-13页 |
| 1．2．2 双水相萃取的基本特点 | 第13页 |
| 1．2．3 双水相萃取体系在酶分离提取中的实例 | 第13-15页 |
| 1．3 本论文的意义及主要内容 | 第15-16页 |
| 第二章 发酵液的制备及预处理 | 第16-24页 |
| 2．1 引言 | 第16-18页 |
| 2．2 实验材料 | 第18-19页 |
| 2．3 实验方法 | 第19-20页 |
| 2．4 结果与讨论 | 第20-22页 |
| 2．4．1 细胞破碎方法的选择 | 第20-21页 |
| 2．4．1．1 破碎前后菌悬液酶活的比较 | 第20页 |
| 2．4．1．2 破碎前后菌悬液光密度的比较 | 第20-21页 |
| 2．4．2 超声波破碎条件的优化 | 第21-22页 |
| 2．5 小结与分析 | 第22-24页 |
| 第三章 双水相体系萃取实验的研究 | 第24-35页 |
| 3．1 引言 | 第24-25页 |
| 3．2 实验材料与方法 | 第25-26页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第26-34页 |
| 3．3．1 天冬氨酸转氨酶的活力pH范围 | 第26-27页 |
| 3．3．2 不同相对分子质量PEG与各盐分的分离纯化效果比较 | 第27-28页 |
| 3．3．3 pH值对双水相体系分配系数和纯化系数的影响 | 第28-30页 |
| 3．3．4 无机盐对双水相体系分配系数和纯化系数的影响 | 第30-32页 |
| 3．3．5 PEG1000/Na2HPO4体系最佳浓度比的选择 | 第32-33页 |
| 3．3．6 双水相体系对破碎液的萃取实验 | 第33-34页 |
| 3．4 小结与分析 | 第34-35页 |
| 第四章 天冬氨酸转氨酶的酶学性质考察 | 第35-47页 |
| 4．1 引言 | 第35页 |
| 4．2 实验材料与方法 | 第35-36页 |
| 4．3 实验结果与讨论 | 第36-46页 |
| 4．3．1 纯酶液的酶学性质研究 | 第36-42页 |
| 4．3．1．1 杂酶对转氨酶活性的影响 | 第36-37页 |
| 4．3．1．2 体系内杂酶对底物和产物的降解实验 | 第37-42页 |
| 4．3．2 粗酶液与纯酶液的性能比较 | 第42-46页 |
| 4．3．2．1 酶的最适反应温度范围 | 第42-44页 |
| 4．3．2．2 酶的最适pH值范围 | 第44页 |
| 4．3．2．3 金属离子对酶催化的影响 | 第44页 |
| 4．3．2．4 辅酶添加对于酶反应的影响 | 第44页 |
| 4．3．2．5 盐浓度对酶转化的影响 | 第44页 |
| 4．3．2．6 苯丙酮酸类似物对酶转化过程的影响 | 第44-46页 |
| 4．4 小结与分析 | 第46-47页 |
| 4．4．1 本章小结 | 第46页 |
| 4．4．2 本章分析 | 第46-47页 |
| 第五章 结论与展望 | 第47-50页 |
| 5．1 结论 | 第47-48页 |
| 5．2 展望 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-49页 |
| 致谢 | 第49-52页 |
| 附录 | 第52-54页 |
