攀枝花块菌多糖的提取、纯化及抗氧化活性研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| 1 块菌概述 | 第12-14页 |
| ·块菌简介 | 第12页 |
| ·块菌的研究概况 | 第12-14页 |
| ·块菌人工栽培技术研究 | 第12页 |
| ·块菌的营养价值研究 | 第12-13页 |
| ·块菌的芳香性成分研究 | 第13页 |
| ·块菌的分子生物学研究 | 第13-14页 |
| 2 多糖概述 | 第14-26页 |
| ·多糖的定义及分类 | 第14-16页 |
| ·多糖的定义 | 第14页 |
| ·多糖的分类 | 第14-15页 |
| ·块菌多糖 | 第15-16页 |
| ·多糖研究的常用方法 | 第16-22页 |
| ·多糖的提取 | 第16-18页 |
| ·多糖的纯化 | 第18-20页 |
| ·多糖的分级 | 第20-22页 |
| ·多糖的生物活性研究 | 第22-25页 |
| ·多糖的免疫调节作用 | 第22-23页 |
| ·多糖的抗病毒活性 | 第23页 |
| ·多糖的抗肿瘤作用 | 第23-24页 |
| ·多糖的抗氧化活性 | 第24-25页 |
| ·其它的生物活性作用 | 第25页 |
| ·多糖研究的现状及展望 | 第25-26页 |
| 3 立题依据与研究内容 | 第26-28页 |
| ·立题依据与研究意义 | 第26页 |
| ·主要研究内容 | 第26-28页 |
| 第二章 块菌多糖的提取工艺研究 | 第28-70页 |
| 1 材料、试剂及仪器 | 第28-29页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·试剂 | 第28页 |
| ·仪器与设备 | 第28-29页 |
| 2 实验方法 | 第29-34页 |
| ·多糖的测定方法 | 第29页 |
| ·葡萄糖标准曲线的绘制 | 第29页 |
| ·多糖含量的测定 | 第29页 |
| ·原料预处理 | 第29页 |
| ·块菌多糖提取工艺流程 | 第29-30页 |
| ·块菌多糖的传统热水浸提法工艺条件研究 | 第30-31页 |
| ·热水浸提法工艺条件单因素试验 | 第30页 |
| ·Box-Behnken中心组合设计试验 | 第30-31页 |
| ·块菌多糖的酶法辅助提取工艺条件研究 | 第31-32页 |
| ·酶法辅助提取工艺条件单因素试验 | 第31页 |
| ·Box-Behnken中心组合设计试验 | 第31-32页 |
| ·块菌多糖的超声波辅助提取工艺条件研究 | 第32-33页 |
| ·单因素试验 | 第32-33页 |
| ·Box-Behnken中心组合设计试验 | 第33页 |
| ·块菌多糖的超声波协同酶法提取工艺条件研究 | 第33-34页 |
| ·单因素试验 | 第33-34页 |
| ·Box-Behnken中心组合设计试验 | 第34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-67页 |
| ·多糖含量的测定 | 第34-35页 |
| ·测定葡萄糖含量标准曲线 | 第35页 |
| ·块菌多糖提取率及含量计算 | 第35页 |
| ·热水浸提法提取块菌多糖的工艺研究 | 第35-40页 |
| ·提取时间的影响 | 第35-36页 |
| ·提取温度的影响 | 第36页 |
| ·液料比的影响 | 第36-37页 |
| ·热水浸提法提取块菌多糖的工艺条件优化 | 第37-40页 |
| ·热水浸提法提取块菌多糖的工艺条件验证试验 | 第40页 |
| ·酶法辅助提取块菌多糖的工艺研究 | 第40-50页 |
| ·酶种类的筛选 | 第40-41页 |
| ·酶解温度的影响 | 第41页 |
| ·pH值的影响 | 第41-42页 |
| ·酶解时间的影响 | 第42-43页 |
| ·酶用量的影响 | 第43页 |
| ·液料比的影响 | 第43-44页 |
| ·酶法辅助提取块菌多糖的工艺条件优化 | 第44-49页 |
| ·块菌多糖的酶法辅助提取工艺条件验证试验 | 第49-50页 |
| ·超声波辅助提取块菌多糖的工艺研究 | 第50-59页 |
| ·超声波温度的影响 | 第50页 |
| ·超声波功率的影响 | 第50-51页 |
| ·超声波时间的影响 | 第51-52页 |
| ·液料比的影响 | 第52页 |
| ·超声波辅助提取块菌多糖的工艺条件优化 | 第52-59页 |
| ·超声辅助提取块菌多糖的工艺条件验证试验 | 第59页 |
| ·超声波协同酶法提取块菌多糖的工艺研究 | 第59-67页 |
| ·方法筛选 | 第59页 |
| ·超声时间的影响 | 第59-60页 |
| ·超声温度的影响 | 第60页 |
| ·超声功率的影响 | 第60-61页 |
| ·酶解时间的影响 | 第61-62页 |
| ·酶解pH值的影响 | 第62页 |
| ·酶解温度的影响 | 第62页 |
| ·超声波协同酶法提取块菌多糖的工艺条件优化 | 第62-67页 |
| ·超声波协同酶法提取块菌多糖的工艺条件验证试验 | 第67页 |
| 4 结论与讨论 | 第67-70页 |
| 第三章 块菌多糖的分离纯化工艺研究 | 第70-90页 |
| 1 材料、试剂及仪器 | 第70页 |
| ·材料 | 第70页 |
| ·试剂 | 第70页 |
| ·主要仪器与设备 | 第70页 |
| 2 试验方法 | 第70-74页 |
| ·块菌多糖脱蛋白研究 | 第70-72页 |
| ·多糖中蛋白质含量的测定 | 第70-71页 |
| ·不同的脱蛋白方法 | 第71页 |
| ·块菌多糖脱蛋白工艺条件研究 | 第71-72页 |
| ·块菌多糖脱色研究 | 第72-74页 |
| ·块菌多糖中色素的测定 | 第72-73页 |
| ·不同的脱色处理 | 第73页 |
| ·块菌多糖脱色工艺条件研究 | 第73-74页 |
| ·块菌多糖透析除杂 | 第74页 |
| ·块菌多糖超滤法分级 | 第74页 |
| 3 结果与分析 | 第74-87页 |
| ·块菌多糖的脱蛋白研究 | 第74-81页 |
| ·块菌多糖中蛋白质的测定结果 | 第75页 |
| ·不同脱蛋白方法的比较 | 第75-76页 |
| ·块菌多糖的酶+Sevage法脱蛋白工艺条件优化 | 第76-81页 |
| ·块菌多糖脱蛋白工艺条件验证试验 | 第81页 |
| ·块菌多糖的脱色研究 | 第81-87页 |
| ·不同脱色处理的比较 | 第81-82页 |
| ·块菌多糖脱色工艺条件优化 | 第82-87页 |
| ·块菌多糖脱色工艺条件验证试验 | 第87页 |
| ·块菌多糖超滤分离的结果 | 第87页 |
| 4 结论与讨论 | 第87-90页 |
| 第四章 块菌多糖的体外抗氧化活性研究 | 第90-99页 |
| 1 材料、试剂及仪器 | 第90页 |
| ·材料 | 第90页 |
| ·试剂 | 第90页 |
| ·主要仪器 | 第90页 |
| 2 试验方法 | 第90-92页 |
| ·块菌多糖总还原能力测定 | 第90页 |
| ·清除有机自由基(DPPH·)活性的测定 | 第90-91页 |
| ·清除羟自由基(·OH)能力的测定 | 第91页 |
| ·清除超氧阴离子(O_2·)能力的测定 | 第91页 |
| ·螯合金属离子能力的测定 | 第91-92页 |
| 3 结果与分析 | 第92-97页 |
| ·块菌多糖总还原能力的测定结果 | 第92页 |
| ·对有机自由基(DPPH·)的清除作用 | 第92-94页 |
| ·对羟自由基(·OH)的清除作用 | 第94-95页 |
| ·对超氧阴离子(O_2~-·)的清除作用 | 第95-96页 |
| ·螯合金属离子能力的测定结果 | 第96-97页 |
| 4 结论与讨论 | 第97-99页 |
| 结论与展望 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-109页 |
| 致谢 | 第109-111页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第111页 |
