| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-15页 |
| 前言 | 第15-25页 |
| 本研究的技术路线框图 | 第25-26页 |
| 1 版纳微型猪近交系间充质干细胞培养条件及其优化 | 第26-43页 |
| ·材料与方法 | 第29-32页 |
| ·细胞株 | 第29-30页 |
| ·材料与试剂 | 第30页 |
| ·仪器及设备 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-32页 |
| ·冻存细胞的复苏 | 第30-31页 |
| ·细胞传代及观察 | 第31页 |
| ·实验分组 | 第31-32页 |
| ·MTT法测细胞增殖 | 第32页 |
| ·数据处理 | 第32页 |
| ·绘细胞生长曲线 | 第32页 |
| ·结果 | 第32-39页 |
| ·血清组 | 第32-33页 |
| ·温度组 | 第33-39页 |
| ·讨论 | 第39-41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-43页 |
| 2 版纳微型猪近交系间充质干细胞定向分化前后免疫原性表达 | 第43-66页 |
| ·材料与方法 | 第45-53页 |
| ·材料与试剂 | 第45-47页 |
| ·仪器与设备 | 第47页 |
| ·方法 | 第47-53页 |
| ·猪外周血淋巴细胞的分离纯化 | 第47-48页 |
| ·BMI-MSC的成骨诱导分化及鉴定 | 第48页 |
| ·Trizol试剂提取细胞总RNA | 第48页 |
| ·RNA纯度、总量测定 | 第48-49页 |
| ·RT-PCR | 第49-51页 |
| ·电泳鉴定RT-PCR产物 | 第51-52页 |
| ·免疫荧光法 | 第52-53页 |
| ·流式细胞术检测SLA-DR表达情况 | 第53页 |
| ·结果 | 第53-60页 |
| ·MSC的体外成骨诱导分化 | 第53-56页 |
| ·BMI-PBLs、未分化BMI-MSCs、已分化BMI-MSCs总RNA提取 | 第56-57页 |
| ·RT-PCR检测未分化和分化MSC的SLA表达情况 | 第57页 |
| ·免疫荧光法检测未分化和分化MSC的SLA-DR表达情况 | 第57-59页 |
| ·流式细胞术检测 | 第59-60页 |
| ·讨论 | 第60-61页 |
| ·小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 3 版纳微型猪近交系间充质干细胞定向分化前后免疫调节作用 | 第66-77页 |
| ·材料与方法 | 第67-70页 |
| ·材料与试剂 | 第67页 |
| ·仪器与设备 | 第67-68页 |
| ·方法 | 第68-70页 |
| ·人外周血淋巴细胞的分离 | 第68页 |
| ·作为刺激细胞的MSCs的准备 | 第68-69页 |
| ·MTS法检测细胞活力 | 第69页 |
| ·BMI-MSCs的免疫调节作用 | 第69-70页 |
| ·数据处理及统计分析 | 第70页 |
| ·结果 | 第70-74页 |
| ·讨论 | 第74-76页 |
| ·小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 全文总结 | 第79-81页 |
| 综述 骨髓间充质干细胞的生物学特性及免疫学特性研究进展 | 第81-98页 |
| 1 骨髓间充质干细胞的生物学特性 | 第81-82页 |
| 2 骨髓间充质干细胞的分离培养 | 第82-84页 |
| 3 骨髓间充质干细胞的诱导分化 | 第84-86页 |
| 4 骨髓间充质干细胞的免疫学特征 | 第86-91页 |
| ·MSC的低免疫原性 | 第87页 |
| ·MSC的免疫调节功能 | 第87-91页 |
| ·抑制T细胞的增殖 | 第87-88页 |
| ·对树突状细胞(DC)和调节性T细胞的影响 | 第88-89页 |
| ·对细胞毒T细胞和NK细胞的影响 | 第89页 |
| ·分化的MSC的免疫学特性 | 第89-90页 |
| ·在宿主体内存活并诱导免疫耐受 | 第90-91页 |
| 5 骨髓间充质干细胞的临床应用 | 第91-97页 |
| ·组织工程种子细胞 | 第92页 |
| ·造血重建 | 第92-93页 |
| ·MSC在骨、软骨修复中的作用 | 第93-95页 |
| ·MSC在肌肉、肌腱再生中的作用 | 第95-96页 |
| ·基因治疗 | 第96-97页 |
| 6 结语 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-104页 |
| 致谢 | 第104-105页 |
| 英文缩写词表 | 第105-106页 |
| 个人简历 | 第106-108页 |
