| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-15页 |
| 第1章 植物无融合生殖研究进展 | 第15-47页 |
| ·什么是无融合生殖? | 第15页 |
| ·无融合生殖现象的普遍性 | 第15-17页 |
| ·无融合生殖的分类 | 第17-18页 |
| ·无融合生殖在农业生产上潜在的应用价值 | 第18-21页 |
| ·无融合生殖性状的研究方法 | 第21-22页 |
| ·绿毛山柳菊属植物,无孢子生殖和自发配子体单性生殖的模式植物 | 第22-23页 |
| ·兼性无融合生殖植物的不同后代类型 | 第23-25页 |
| ·无融合生殖植物细胞类型同一性的早期线索 | 第25-26页 |
| ·有性生殖和无融合生殖途径间的分子学联系 | 第26-29页 |
| ·来自胚珠其它组织的信号 | 第29-30页 |
| ·无融合生殖现象的遗传学基础 | 第30-33页 |
| ·为什么配子体无融合生殖植物都是多倍体? | 第33-35页 |
| ·无融合生殖基因的识别 | 第35-37页 |
| ·诱导无融合生殖突变体策略 | 第37-38页 |
| ·作物中导入无融合生殖性状的发展前景 | 第38页 |
| 参考文献(Reference): | 第38-47页 |
| 第2章 MSP1编码蛋白配体的识别、时空表达及功能研究 | 第47-87页 |
| ·前言 | 第47-49页 |
| ·材料与方法 | 第49-58页 |
| ·材料的种植和取样 | 第49-50页 |
| ·显微镜操作 | 第50页 |
| ·BLAST和系统进化树的构建 | 第50页 |
| ·RNA提取、RT-PCR和离体转录 | 第50-52页 |
| ·RNA原位杂交 | 第52-53页 |
| ·酵母双杂交(Y2H)和双分子荧光互补分析(BiFC) | 第53-55页 |
| ·入门载体的构建 | 第53页 |
| ·酵母双杂交 | 第53-54页 |
| ·双分子荧光互补分析(BiFC) | 第54-55页 |
| ·水稻OsTDL1A基因的RNA干扰 | 第55-58页 |
| ·RNA干扰载体的构建 | 第55-56页 |
| ·农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第56-57页 |
| ·RNA干扰材料的筛选 | 第57-58页 |
| ·结果 | 第58-74页 |
| ·水稻中存在着两个拟南芥TPD1同源基因:OsTDL1A和OsTDL1B | 第58-60页 |
| ·OsTDL1A,OsTDL1B同MSP1在部分组织中共表达 | 第60-63页 |
| ·MSP1,OsTDL1A和OsTDL1B在幼穗中的转录部位研究 | 第63-65页 |
| ·OsTDL1A与MSP1富亮氨酸重复区域存在直接的互作关系 | 第65-68页 |
| ·亚细胞定位的预测 | 第65-66页 |
| ·酵母双杂交分析 | 第66-67页 |
| ·洋葱表皮细胞内的双分子荧光互补分析 | 第67-68页 |
| ·RNA干扰抑制OsTDL1A在幼穗中的转录水平 | 第68-71页 |
| ·OsTDL1A RNA干扰载体的构建 | 第68-69页 |
| ·RNA干扰植株的分子生物学检测 | 第69-71页 |
| ·OsTDL1A RNAi植株胚珠内产生与msp1突变体相同的表现型 | 第71-74页 |
| ·讨论 | 第74-79页 |
| ·大孢子母细胞和无孢子生殖起始细胞的比较 | 第74-75页 |
| ·OsTDL1A干扰植株能恢复雄性可育 | 第75页 |
| ·MSL1基因的识别 | 第75-76页 |
| ·OsTDL1A同MSP1基因富亮氨酸重复区域在植物体内互作 | 第76-77页 |
| ·水稻无孢子生殖的诱导 | 第77-79页 |
| 附加信息 | 第79-82页 |
| 参考文献(Reference) | 第82-87页 |
| 第3章 MSP1基因起始密码子上游序列及其激酶域调控功能的研究 | 第87-109页 |
| ·引言 | 第87-88页 |
| ·材料与方法 | 第88-93页 |
| ·小量基因组DNA的提取 | 第88-89页 |
| ·化学试剂的准备 | 第88页 |
| ·小量基因组DNA的提取 | 第88-89页 |
| ·日本晴和7个野生稻MSP1基因启动子的克隆 | 第89页 |
| ·Southern杂交 | 第89-90页 |
| ·MSP1转录起始位点的识别 | 第90页 |
| ·双向电泳 | 第90-93页 |
| ·总蛋白质的提取 | 第90-91页 |
| ·第一向和第二向电泳 | 第91-92页 |
| ·胶的染色 | 第92页 |
| ·蛋白质的定量与定性分析 | 第92-93页 |
| ·结果 | 第93-103页 |
| ·聚合酶链式反应(PCR)扩增假定的启动子区域 | 第93-95页 |
| ·MSP1假定启动子区域的克隆及Southern杂交验证 | 第95-97页 |
| ·不同基因组野生稻MSP1假定启动子区域的序列比较分析 | 第97-98页 |
| ·MSP1上游基因转录起始位点的确定 | 第98-101页 |
| ·MSP1纯合突变体及野生型的蛋白表达分析 | 第101-103页 |
| ·讨论 | 第103-107页 |
| ·不同基因组野生稻msp1启动子区域的进化 | 第103-104页 |
| ·MSP1基因结构的预测 | 第104-106页 |
| ·野生型和突变体蛋白表达的差异 | 第106-107页 |
| 参考文献(Reference) | 第107-109页 |
| 第4章 水稻腈水解酶基因的识别、表达和细胞学定位 | 第109-122页 |
| ·引言 | 第109-110页 |
| ·材料与方法 | 第110-111页 |
| ·材料 | 第110页 |
| ·BLAST搜索和DNA序列鉴定 | 第110页 |
| ·系统进化树的构建和基因结构画图 | 第110页 |
| ·RNA提取和RT-PCR | 第110-111页 |
| ·结果 | 第111-117页 |
| ·水稻腈水解酶基因的识别 | 第111-112页 |
| ·水稻腈水解酶基因的结构分析 | 第112-114页 |
| ·水稻腈水解酶基因的表达分析 | 第114-115页 |
| ·水稻腈水解酶基因mRNA的细胞学定位:RNA原位杂交 | 第115-117页 |
| ·讨论 | 第117-119页 |
| 参考文献(References): | 第119-122页 |
| 附录A插图目录 | 第122-124页 |
| 附录B插图目录 | 第124页 |
