| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-14页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 实验材料 | 第19-27页 |
| 1.主要试剂 | 第19-21页 |
| 2.细胞培养及处理用液 | 第21-22页 |
| 3.MTT实验相关用液 | 第22页 |
| 4.ROS检测相关用液 | 第22页 |
| 5.Bradford法蛋白定量相关用液 | 第22-23页 |
| 6.Western blot蛋白电泳相关用液 | 第23-25页 |
| 7.彗星实验相关用液 | 第25页 |
| 8.主要仪器 | 第25-27页 |
| 实验方法 | 第27-34页 |
| 1.细胞培养及处理 | 第27页 |
| 2.MTT法检测TBT对FL细胞活力的影响 | 第27-28页 |
| 3.PI/Annexin Ⅴ双染色法检测细胞凋亡 | 第28页 |
| 4.细胞形态的观察 | 第28-29页 |
| 5.细胞骨架改变的观察 | 第29页 |
| 6.caspase-3酶活化检测 | 第29-30页 |
| 7.活性氧(ROS)水平测定 | 第30页 |
| 8.细胞蛋白提取 | 第30-31页 |
| 9.Western blot法检测细胞色素c、Bcl-2、Bax和p53的蛋白水平 | 第31-32页 |
| 10.彗星实验 | 第32-33页 |
| 11.数据处理 | 第33-34页 |
| 结果 | 第34-54页 |
| 1.TBT暴露可影响FL细胞活力 | 第34-35页 |
| 2.TBT暴露可诱导FL细胞发生调亡 | 第35-38页 |
| 3.TBT暴露可影响FL细胞形态 | 第38页 |
| 4.TBT暴露可破坏FL细胞骨架 | 第38-41页 |
| 5.TBT暴露可导致FL细胞caspase-3活化 | 第41-42页 |
| 6.TBT暴露可导致FL细胞活性氧(ROS)水平的升高 | 第42-43页 |
| 7.TBT暴露可导致FL细胞胞液中细胞色素c蛋白水平上升 | 第43-45页 |
| 8.TBT暴露可导致FL细胞Bcl-2蛋白水平的下降和Bax蛋白水平的上升,从而导致Bax/Bcl-2比值的上升,但对p53蛋白水平无影响 | 第45-51页 |
| 9.TBT暴露可导致FL细胞DNA损伤 | 第51-54页 |
| 讨论 | 第54-66页 |
| 1.TBT在低浓度短时间内诱发FL细胞发生凋亡,在高浓度长时间时表现出其细胞毒性,导致FL细胞死亡 | 第54-55页 |
| 2.TBT导致的FL细胞氧化损伤和DNA损伤紧密相关,而且两者在TBT诱导的FL细胞凋亡中都有重要作用 | 第55-57页 |
| 3.Bcl-2和Bax参与TBT诱导的FL细胞凋亡,而p53不参与此过程 | 第57-59页 |
| 4.凋亡重要因子细胞色素c与凋亡执行酶caspase-3参与TBT诱导的FL细胞凋亡 | 第59-62页 |
| 5.TBT导致的细胞骨架的破坏是其导致细胞形态改变的原因,而且细胞骨架的破坏在TBT诱导的FL细胞凋亡中有重要作用 | 第62-63页 |
| 6.综合本研究结果探讨TBT诱导FL细胞发生凋亡可能的机理 | 第63-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 综述 | 第75-101页 |
| 1.三丁基锡诱导的细胞凋亡的机制 | 第75-89页 |
| 2.Mechanism of TBT-induced cytoskeleton disruption in the apoptosis | 第89-101页 |
| 在读期间科研成果 | 第101-102页 |
| 参与的科研项目 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103页 |
