缩略词表 | 第1-8页 |
中文摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
1 文献综述 | 第13-35页 |
·表观遗传学概述 | 第13-14页 |
·表观遗传学定义 | 第13页 |
·表观遗传学与经典遗传学 | 第13-14页 |
·表观遗传调控分子机制 | 第14-23页 |
·真核生物染色质的结构 | 第14-15页 |
·DNA甲基化 | 第15-16页 |
·组蛋白修饰 | 第16-18页 |
·表观修饰信号的识别 | 第18-21页 |
·其它机制 | 第21-23页 |
·染色质变构因子 | 第23-29页 |
·细胞周期调控 | 第29-35页 |
·细胞周期调控的研究 | 第29-31页 |
·植物的细胞周期调控的研究 | 第31-33页 |
·表观遗传调控细胞周期 | 第33-35页 |
2. 材料和方法 | 第35-45页 |
·水稻材料 | 第35页 |
·载体及构建 | 第35-36页 |
·菌株 | 第36页 |
·水稻SNF2基因序列的分析 | 第36页 |
·遗传转化 | 第36页 |
·RNA抽提、RT-PCR、定量PCR和Northern杂交 | 第36-37页 |
·DNA的抽提以及突变体的基因型鉴定 | 第37页 |
·组织切片 | 第37页 |
·叶绿素的测定 | 第37-38页 |
·组蛋白的抽提和western blot | 第38页 |
·水稻全基因组基因芯片分析 | 第38-39页 |
·染色质免疫共沉淀 | 第39-40页 |
·体外组蛋白结合实验 | 第40页 |
·酵母双杂交 | 第40页 |
·MMS处理 | 第40-45页 |
3. 结果与分析 | 第45-84页 |
·水稻CHD基因的序列分析与转基因材料的获得 | 第45-53页 |
·水稻CHD基因的序列分析 | 第45-49页 |
·遗传转化材料的获得 | 第49-53页 |
·转基因材料分析与CHD1功能研究 | 第53-73页 |
·CHD1的基因结构分析以及cDNA全长的分析 | 第53页 |
·CHD1的表达模式 | 第53-54页 |
·chd1突变体和CHD1 RNAi转基因植株出现相同的表型 | 第54-57页 |
·chd1植株叶片和茎的细胞数目减少 | 第57-59页 |
·chd1植株叶片上表面表皮毛增多且叶片的叶绿素含量下降 | 第59-60页 |
·WEE1在chd1中的表达量上升 | 第60-62页 |
·水稻WEE1和CHD1对DNA诱变剂MMS呈现相反的表达变化 | 第62-64页 |
·chd1突变体中WEE1的上升表达仅在田间种植的叶片中发生 | 第64-65页 |
·chd1较野生型对MMS更敏感 | 第65-67页 |
·DNA损伤早期诱导的基因在chd1中的表达量没有变化 | 第67-68页 |
·chd1植株全基因组芯片分析 | 第68-71页 |
·western blot检测chd1植株各种组蛋白修饰的变化 | 第71-73页 |
·CHD1的PHD结构域可以在体外与H3K27me3结合 | 第73页 |
·水稻LHP1的功能分析 | 第73-77页 |
·水稻LHP1基因的结构以及cDNA全长的获得 | 第73-75页 |
·LHP1的表达谱分析 | 第75页 |
·LHP1的chromoshadow结构域可以形成二聚体 | 第75-76页 |
·LHP1 RNAi转基因植株没有表型 | 第76-77页 |
·HDAC11的互作蛋白的筛选 | 第77-84页 |
·酵母双杂交筛选HDAC11的互作蛋白 | 第77-79页 |
·筛选出来的蛋白为水稻特异基因并在籼粳之间存在多态性 | 第79-81页 |
·重新转化验证互作 | 第81-82页 |
·HDAP蛋白的N端不参与与HDAC11的互作 | 第82-83页 |
·HDAP与HDAC11的表达谱分析 | 第83-84页 |
4. 讨论 | 第84-89页 |
·CHD1在DNA损伤信号传导中的作用 | 第84-86页 |
·水稻LHP1可能有别于拟南芥同源基因的功能 | 第86页 |
·CHD1抑制基因的表达可能需要H3K27的三甲基化 | 第86-87页 |
·CHD1可能在水稻发育中也具有重要作用 | 第87-89页 |
参考文献 | 第89-99页 |
附录Ⅰ 部分实验的操作流程 | 第99-110页 |
附录Ⅱ 作者简历 | 第110-112页 |
致谢 | 第112-113页 |